Flourensia fiebrigii (Asterales: Asteraceae), fuente de metabolitos antipatogénicos
Palabras clave:
Biofilms, Biomphalaria peregrina, espectroscopias, extractos, Flourensia fiebrigi, actividad antipatogénica, Staphylococcus aureusResumen
Verni, Cecilia; Alva, Mariana; Muruaga, Nora; Borkosky, Susana; Car tagena, Elena; Bardón, Alicia. 2011. “Flourensia fiebrigii (Asterales: Asteraceae), fuente de metabolitos antipatogénicos”. Lilloa 48 (1). En este trabajo se aborda el estudio espectroscópico de extractos obtenidos del arbusto Flourensia fiebrigii y su actividad sobre el biofilm maduro de dos bacterias patógenas de Staphylococcus aureus, una cepa de colección internacional y la otra resistente a meticilina. Se determinó la toxicidad de los extractos frente al molusco planorbídeo Biomphalaria peregrina. El estudio espectroscópico de UV, FT-IR, 1HRMN y 13C de los extractos de F. fiebrigii puso en evidencia la presencia de flavonoides prenilados. El extracto CHCl3 descerado de las partes aéreas a 50 µg/mL, mostró la mayor actividad reductora del biofilm de la cepa meticilinoresistente (65%); mientras que el extracto CHCl3 completo, exhibió una reducción del 60% a 100 µg/mL. Las dosis activas de los extractos frente a las cepas patógenas de S. aureus no resultaron tóxicas para B. peregrina.
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Citas
Adwan, G. & M. Mhanna. 2008. Synergistic effects of plants extracts and antibiotics on Staphylococcus aureus strains isolated from clinical specimens. Middle-East Journal of Scientific Research, 3: 134-139.
Bohlmann, F. & M. Grenz.1977. Über Inhaltsstoffe der Gattung Flourensia. Chemische Berichte, 110: 295-300.
Bohlmann, F. & J. Jakupovic.1979. Neue sesquiterpene, triterpene, flavanone und andere Aromatische
Verbindungen aus Flourensia heterolepis. Phytochemistry, 18: 1189-1194.
Bohlmann, F.; J. Jakupovic; A. Schuster; R.M. King & H. Robinson. 1984. Eudesmanolides and costic acid derivatives from Flourensia macrophylla. Phytochemistry, 23: 1445-1448.
Cabrera, A. L. 1978. Compositae. En A. L. Cabrera (ed), Fl. Prov. Jujuy, Colecc. Ci. Inst. Nac. Tecnol. Agrpopecu., 13 (10): 1-726.
Cartagena, E.; O. Álvarez Colom; A. Neske; J. C. Valdez & A. Bardón. 2007. Effects of plant lactones on the production of biofilm of Pseudomonas aeruginosa. Chemical and Pharmaceutical Bulletin, 55: 22-25.
Diaz Garces,R. & J. R. Ferrer Lopez. 1996. Efecto de las dosis letales de las plantas de la família Agavaceae sobre la actividad cardíaca y la oviposición de Biomphalaria havanensis (Mollusca: Planorbidae). Revista Cubana de Medicina Tropical, 48: 15-20.
Dillon, M. O. 1984. A Systematic Study of Flourensia (Asteraceae-Heliantheae), Fieldiana Bot., 16: 1-66.
Femenía, J. H. 2009. Flora del Famatina. Diario chilecito.com (inédito).
García, M.; A. González Coloma; O. J. Donadel; C. E. Ardanaz; C. E. Tonn & M. E. Sosa. 2007. Insecticidal effects of Flourensia oolepis Blake (Asteraceae) essential oil. Biochemical Systematic and Ecology, 35: 181-187.
Gilabert, M.; A. N. Ramos; M. M. Schiavone; M. E. Arena & A. Bardón. 2011. Bioactive sesqui- and diterpenoids from the Argentine Liverwort Porella chilensis. Journal of Natural Products, 74 (4): 574-579.
Godin, P. 1954. A new spray reagent for paper chromatography of polyols and cetoses. Nature, 174: 134.
Harborne, J. B.1998. Flavonoids. In Phytochemical methods. A guide to modern techniques of plant analysis.Third edition. Chapman & Hall. London p. 60.
Marchant, Y.; F. Balza; B. F. Abeysekera & G. H. N. Towers. 1984. Molluscicidal activity of sesquiterpene lactones. Biochemical Systematic & Ecology, 12: 285-286.
Monroe, D. 2007. Looking for chinks in the armor of bacterial biofilms. PLoS Biology, 5: 2458-2461.
Mott, K. E. (1987). Plant Molluscicides. John Wiley, Chichester.
O’Toole, G. A. & R. Kolter. 1998. Initiation of biofilm formation in Pseudomonas fluorescens WCS365 proceeds via multiple, convergent signalling pathways: a genetic analysis. Molecular Microbiology, 28: 449-461.
Parellada, E. A.; A. N. Ramos; M. Ferrero; E. Cartagena; A. Bardón; J. C. Valdez & A. Neske. 2011. Squamocin mode of action to stimulate biofilm formation of Pseudomonas plecoglossicida J26, a PAHs degrading bacterium. International Biodeterioration & Biodegradation, 65: 1066-1072.
Rittschof, D. & P. McClellan-Green. 2005. Mollusks as multidisciplinary models in environmental toxicology. Marine Pollution Bulletin, 50: 369-373.
Silva, M. & A. Scopel. 2005. Flourensia oolepis S. F. Blake y F. campestris Griseb. (Asteraceae): Estudios preliminares en la sierras de Córdoba. Bol. Soc. Argent. Bot., 40: 107-108.
Socolsky, C.; E. Cartagena; Y. Asakawa & A. Bardón. 2011. Acylphloroglucinols from the fern Elaphoglossum lindbergii. ARKIVOC, 7: 450-460.
Taylor, P. W.; P. D. Stapleton & J. P. Luzio. 2002. New ways to treat bacterial infections Drug Discovery Today, 7: 1086-1091.
Uriburu, M. L.; J. R. de la Fuente; J. Palermo; R. R. Gil & V. E. Sosa. 2004. Constituents of two Flourensia species. Phytochemistry, 65: 2039-2043.
Uriburu, M. L.; J. R. de la Fuente; J. Palermo & V. E. Sosa. 2005. A Chlorinated dihydrobenzofuran from Flourensia riparia. Journal of Argentine Chemical Society, 93: 161-164.
Uriburu, M. L.; R. R. Gil; V. E. Sosa & J. R.de la Fuente. 2007. Prenylflavonoids from Flourensia fiebrigii. Phytochemistry, 68: 1295-1299.
Valdez, J. C.; M. C. Peral; M. Rachid; M. Santana & G. Perdigón. 2005. Interference of Lactobacillus plantarum with Pseudomonas aeruginosa in vitro and in infected burns: the potential use of probiotics in wound treatment. European Society of Clinical Microbiology and Infectious Diseases, 11: 472-479.
WHO. 1983. Reports of the scientific working group on plants molluscicides. Document TDR/SCH.SWG/4/83.3. Geneva: World Health Organization.
Wink, M. 1999. Introduction: biochemistry, role and biotechnology of secondary metabolites. In Functions of Plant Secondary Metabolites and Their Exploitation in Biotechnology. Wink, M. Sheffield Academic Press, England pp. 1-16.