Interação entre Cladorrhinum samala (Sordariales, Ascomycota) e tomateiro (Lycopersicon esculentum): promoção do crescimento vegetal e colonização radicular

Autores

DOI:

https://doi.org/10.30550/j.lil/2134

Palavras-chave:

Cladorrhinum samala, microorganismos del suelo, endófito radical, PGPF

Resumo

En la actualidad, se han intensificado las investigaciones orientadas a la identificación de fuentes alternativas para la producción de biofertilizantes a base de hongos del suelo, con especial énfasis en especies poco estudiadas y escasamente caracterizadas. Durante el presente estudio se llevó a cabo un análisis comparativo de la capacidad de promoción del crecimiento de plantas de tomate por parte de tres aislamientos nativos de Cladorrhinum samala (INTA-AR1, INTA-AR5 e INTA-AR32), y dos cepas de referencia: C. samala CBS 302.9 y C. foecundissimum CBS 180.66. Los resultados obtenidos permitieron identificar a la cepa C. samala INTA-AR1 como la más prometedora, debido a los incrementos significativos  en el peso seco radicular y en el peso fresco del tallo  con respecto al tratamiento control (sin inoculación fúngica) y a los tratamientos con los otros hongos. Se evidenció un incremento del índice de verdor, que demostró un aumento progresivo asociado al incremento en el porcentaje de inóculo aplicado. Se observó que las hifas colonizaban la raíz de manera superficial a las 72 h y posteriormente en forma endófita a los 40 días. Este estudio permitió la selección de la cepa nativa de C. samala INTA-AR1 como candidata para su aplicación en diversos cultivos como promotora del crecimiento vegetal.

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Referências

Adedayo, A. A. y Babalola, O. O. (2023). Rhizosphere plant-growth-promoting fungi enhance the growth of crop plants. Journal of Fungi 9: 239.

Balaguera H. E., Álvarez-Herrera, J. G. y Rodríguez, J. D. (2008). Efecto del déficit de agua en el trasplante de plántulas de tomate (Solanum lycopersicum L.). Agronomía Colombiana 26 (2): 246-255. Retrieved April 29, 2025, from http://www.scielo.org.co/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0120-99652008000200009&lng=en&tlng=es

Blancard, D. (2011). Enfermedades del tomate: Identificar, conocer y controlar. Ediciones Mundi-Prensa, Madrid (España)- Cuauhtémoc (México).

Bohner, T. O. L., Araújo, L. E. B. y Nishijima, T. (2013). O impacto ambiental do uso de agrotóxicos no meio ambiente e na saúde dos trabalhadores rurais. Revista eletrônica do curso de direito da UFSM 8: 329-341. URL https://doi.org/10.5902/198136948280

Borda, F. y Arbeláez, G. (1993). Determinación del antagonismo del aislamiento T 95 de Trichoderma harzianum sobre Fusarium oxysporum f. sp. cucumerinum en plantas de pepino cohombro. Agronomía Colombiana 10: 45-51.

Calabi-Floody, M., Medina, J., Rumpel, C., Condron, L. M., Hernandez, M., Dumont, M. y de La Luz Mora, M. (2018). Smart fertilizers as a strategy for sustainable agriculture. Advances in Agronomy 147: 119-157. URL https://doi.org/10.1016/bs.agron.2017.10.003

Carmarán, C. C., Berretta, M., Martínez, S., Barrera, V., Munaut, F. y Gasoni, L. (2015). Species diversity of Cladorrhinum in Argentina and description of a new species, Cladorrhinum australe. Mycological Progress 14: 1-11.

Chojnacka, K., Skrzypczak, D., Szopa, D., Izydorczyk, G., Moustakas, K. y Witek-Krowiak, A. (2023). Management of biological sewage sludge: Fertilizer nitrogen recovery as the solution to fertilizer crisis. Journal of Environmental Management 326: 116602. https://doi.org/10.1016/j.jenvman.2022.116602

Coronel, C., Alzugaray, C. y Bueno, M. (2017). Utilización de técnicas biotecnológicas para la multiplicación clonal de leñosas nativas de interés maderero y medicinal. XXI Encuentro de Jóvenes Investigadores de la Universidad Nacional del Litoral.

Di Rienzo J. A., Casanoves F., Balzarini M. G., Gonzalez L., Tablada M. y Robledo C. W. (2020). InfoStat versión 2020. Centro de Transferencia InfoStat, FCA, Universidad Nacional de Córdoba, Argentina. http://www.infostat.com.ar

Farias, C. P., Carvalho, R. C., Resende, F. M. L. y Azevedo, L. C. B. (2018). Consortium of five fungal isolates conditioning root growth and arbuscular mycorrhiza in soybean, corn, and sugarcane. Anais da Academia Brasileira de Ciências 90 (4): 3649-3660. https://doi.org/10.1590/0001-3765201820180161

Gasoni, L. y Stegman de Gurfinkel, B. (1997). The endophyte Cladorrhinum foecundissimum in cotton roots. Effects on phosphorus uptake and host grow. Mycological Research 101 (7): 867-870.

Gill, S. S., Gill, R., Trivedi, D. K., Anjum, N. A., Sharma, K. K., Ansari, M. W., ... y Tuteja, N. (2016). Piriformospora indica: potential and significance in plant stress tolerance. Frontiers in Microbiology 7: 332. https://doi.org/10.3389/fmicb.2016.00332

Gopalan, N. R., Nikhil, P. T., Sharma, R. y Mohapatra, S. (2023). The use of microbes as a combative strategy for alleviation of abiotic and biotic stresses. Unravelling Plant-Microbe Synergy (pp 175-193). Academic Press. https://doi.org/10.1016/B978-0-323-99896-3.00010-2

Hernández-Valladares, N. L., Palemón-Alberto, F., Damián-Nava, A., Cruz-Lagunas, B., Herrera-Castro, N. D., Ortega-Acosta, S. Á., Jiménez, J. T. y Reyes-García, G. (2021). Inoculación de bacterias promotoras de crecimiento vegetal y su efecto en ecotipos de tomate. Revista fitotecnia mexicana 44 (4): 581-589. https://doi.org/10.35196/rfm.2021.4.581

Hossain, M. M., Sultana, F. y Islam, S. (2017). Plant growth-promoting fungi (PGPF): phytostimulation and induced systemic resistance. Plant-Microbe Interactions in Agro-Ecological Perspectives: Volume 2: Microbial Interactions and Agro-Ecological Impacts (pp 135-191).

Hurtado, E., González-Vallejos, F., Roper, C., Bastías, E. y Mazuela, P. (2017). Propuesta para la determinación del contenido de clorofila en hojas de tomate. Idesia (Arica) 35 (4): 129-130. https://dx.doi.org/10.4067/S0718-34292017000400129

Kruskal W. H. y Wallis. W. A. (1952). Use of ranks in one-criterion variance analysis. Journal of the American Statistical Association 47 (260): 583-621.

Leventis, G., Tsiknia, M., Feka, M., Ladikou, E. V., Papadakis, I. E., Chatzipavlidis, I., Papadopoulou K. y Ehaliotis, C. (2021). Arbuscular mycorrhizal fungi enhance growth of tomato under normal and drought conditions, via different water regulation mechanisms. Rhizosphere 19: 100394.

Maciá-Vicente J. G., Jansson H. B. y Lopez-Llorca L. V. (2009). Assessing fungal root colonization for plant improvement. Plant Signaling & Behavior 4 (5): 445-447. https://doi.org/10.4161/psb.4.5.8393

Maeso, D. y Walasek, W. (2012). Evaluación de métodos para desinfectar semillas de tomate contra cancro bacteriano (Clavibacter michiganensis subsp. michiganensis). Agrociencia (Uruguay) 16 (1): 134-142.

Mamani de Marchese, A. y Filippone, M. P. (2018). Bioinsumos: componentes claves de una agricultura sostenible. Revista Agronómica del Noroeste Argentino 38 (1): 9-21.

Martí, A. S., Ferrer, A. S., Gómez, R. B. y Casacuberta, A. A. (2021). Producción de biopesticidas fúngicos: una alternativa para la valorización de residuos agroindustriales. IndustriAmbiente: Gestión Medioambiental y Energética 33: 24-30.

Martin, M., Saparrat, M. C. N., Barrera, V. A. y Gasoni, L. (2019). Mini-review: Cladorrhinum species, their diversity and application in biotechnology. Nova Hedwigia 108 (3-4): 489-503.

Mendoza, M., González, G., Santelises, A., Etchevers Barra, J. y Santizó Rincón, J. (1998). Estimación de la concentración de nitrógeno y clorofila en tomate mediante un medidor portátil de clorofila. Terra Latinoamericana 16 (2): 135-141.

Michel-Aceves, A. C., Otero-Sánchez, M. A., Martínez-Rojero, R. D., Rodríguez-Morán, N. L., Ariza-Flores, R. y Barrios-Ayala, A. (2008). Producción masiva de Trichoderma harzianum rifai en diferentes sustratos orgánicos. Revista Chapingo. Serie Horticultura 14 (2): 185-191.

Miranda, V., Silva-Castro, G. A., Ruiz-Lozano, J. M., Fracchia, S. y García-Romera, I. (2023). Fungal endophytes enhance wheat and tomato drought tolerance in terms of plant growth and biochemical parameters. Journal of Fungi 9 (3): 384.

Mroginski, L. A. y Roca, M. W. (1991). Establecimiento de cultivos de tejidos vegetales in vitro. Centro Internacional de Agricultura Tropical (CIAT). Cali, Colombia 19-40.

Novoa, S. A. R. y Villagrán A. N. (2002). Evaluación de un instrumento medidor de clorofila en la determinación de niveles de nitrógeno foliar en maíz. Agricultura Técnica 62 (1): 166-171. http://dx.doi.org/10.4067/S0365-28072002000100017

Oliveros-Bastidas, A. D. J., Macías, F. A., Fernández, C. C., Marín, D. y Molinillo, J. M. (2009). Exudados de la raíz y su relevancia actual en las interacciones alelopáticas. Química Nova 32: 198-213. https://doi.org/10.1590/S0100-40422009000100035

Organización de Naciones Unidas para la Alimentación y Agricultura (FAO) (2016). El Estado Mundial de la Agricultura y la Alimentación. Cambio Climático, Agricultura y Seguridad Alimentaria. Recuperado de: goo.gl/6E2TtQ.

Pinheiro, J. C. y Bates, D. M. (2000). Mixed-Effects Models in S and S-PLUS. Springer science & business media.

Porto, J. S., de Queiroz Costa, R., Rebouças, T. N. H., Lemos, O. L., Luz, J. M. Q. y Amorim, F. (2014). Índice SPAD e crescimento do tomateiro em função de diferentes fontes e doses de nitrogênio. Scientia Plena 10 (11).

Quinn, G. P. y Keough, M. J. (2002). Experimental Design y Data Analysis for Biologists. Cambridge University Press. https://doi.org/10.1017/CBO9780511806384

R?ut, I., C?lin, M., Capr?, L., Gurban, A. -M., Doni, M., Radu, N. y Jecu, L. (2021). Cladosporium sp. isolate as fungal plant growth promoting agent. Agronomy 11 (2): 392. https://doi.org/10.3390/agronomy11020392

Rodriguez, R. J., White Jr., J. F., Arnold, A. E. y Redman, R. S. (2009). Fungal endophytes: diversity and functional roles. New Phytologist 182 (2): 314-330. https://doi.org/10.1111/j.1469-8137.2009.02773.x

Ros, M., Medrano, L., Alguacil, M. del M., Alejandre, J., Del Rio, G., Sacristan, D., Delgado-Baquerizo, M., Sánchez-Rodríguez, A. R., Ochoa-Hueso, R. y Pascual, J. A. (2024). Bioindicadores para el monitoreo de la biodiversidad y los servicios ecosistémicos del suelo. Ciencia del Suelo 42 (2). https://ojs.suelos.org.ar/index.php/cds/article/view/867

Rothen, C., Miranda, V., Fracchia, S., Godeas, A. y Rodríguez, A. (2018). Microdochium bolleyi (Ascomycota: Xylariales): Physiological characterization and structural features of its association with wheat. Boletín de la Sociedad Argentina de Botánica 53 (2): 1-10.

Saccardo, P. A. y Marchal, E. L. (1885). Reliquiae mycologicae Westendorpianae. Revue Mycologique Toulouse 7: 140-149.

Santoyo, G., Urtis-Flores, C. A., Loeza-Lara, P. D., Orozco-Mosqueda, M. D. C. y Glick, B. R. (2021). Rhizosphere colonization determinants by Plant Growth-Promoting Rhizobacteria (PGPR). Biology 10 (6): 475. https://doi.org/10.3390/biology10060475

Saparrat, M. C. N., Estevez J. M., Troncozo M. I., Arambarri, A. y Balatti, P. (2010). In vitro depolymerization of Scutia buxifolia leaf-litter by a dominant Ascomycota Ciliochorella sp. International Biodeterioration & Biodegradation 64 (3): 262-266. https://doi.org/10.1016/j.ibiod.2010.02.001

Schulz, B. y Boyle, C. (2005). The endophytic continuum. Mycological research 109 (6): 661-686.

Spagnoletti, F. N. y Chiocchio, V. M. (2020). Tolerance of dark septate endophytic fungi (DSE) to agrochemicals in vitro. Revista Argentina de Microbiología 52 (1): 43-49.

Soval-Villa, M., Wood, C. W. y Guertal, E. A. (2002). Tomato leaf chlorophyll meter readings as affected by variety, nitrogen form, and nighttime nutrient solution strength. Journal of plant nutrition 25 (10): 2129-2142.

Valland, G. E. y Goodman, R. M. (2004). Systemic Acquired Resistance and Induced Systemic Resistance in Conventional Agriculture. Crop Science 44: 1920-1934.

Waqar, S., Bhat, A. A. y Khan, A. A. (2023). Endophytic fungi: Unravelling plant-endophyte interaction and the multifaceted role of fungal endophytes in stress amelioration. Plant Physiology and Biochemistry 206: 1-26. https://doi.org/10.1016/j.plaphy.2023.108174

Waqas, M., Khan, A. L., Kamran, M., Hamayun, M., Kang, S. -M., Kim, Y. -H. y Lee, I. J. (2012). Endophytic fungi produce gibberellins and indoleacetic acid and promotes host-plant growth during stress. Molecules 17 (9): 10754-10773. https://doi.org/10.3390/molecules170910754

Zuur, A. F., Ieno, E. N. y Meesters, E. H. W. G. (2009). A Beginner’s Guide to R. New York: Springer.

Interacción entre Cladorrhinum samala (Sordariales, Ascomycota) y tomate (Solanum lycopersicum var. platense): Promoción del crecimiento vegetal y colonización radicular

Publicado

2025-07-03

Como Citar

Martin, M., Guidobono, J. S., Gasoni, L. A., Barrera, V. A., & Saparrat, M. C. N. (2025). Interação entre Cladorrhinum samala (Sordariales, Ascomycota) e tomateiro (Lycopersicon esculentum): promoção do crescimento vegetal e colonização radicular. Lilloa, 61(s2), 111–129. https://doi.org/10.30550/j.lil/2134

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