E. S. Bravo Filho et al.: Multiplicação in vitro e aclimatização de Melocactus sergipensis

Multiplicação in vitro e aclimatização de Melocactus

sergipensis

Resumo — Melocactus sergipensis é uma espécie recém-descoberta, endêmica do estado

de Sergipe e criticamente ameaçada de extinção. O objetivo desta pesquisa foi estabelecer

um protocolo para micropropagação e aclimatização de plantas de M. sergipensis. O experi-

mento foi instalado em delineamento inteiramente casualizado, com quatro tratamentos, 10

repetições e em cada unidade experimental foi introduzido um explante. Os explantes foram

obtidos de seções medianas do caule com aproximadamente 5 mm. O meio nutritivo foi ½

sais de MS suplementado com 30 g L

-1

de sacarose, gelificado com 7 g L

-1

de ágar e com

as seguintes concentrações de fitorreguladores: 6-benzilaminopurina (BAP) [0,0; 1,5; 3,0 e

6,0 mg L

-1

] e ácido naftalenoaético (ANA) [0,0; 1,5; 3,0 e 6,0 mg L

-1

] e as combinações

BAP/ANA [0,0; 1,0/0,5; 2,0/1,0 e 4,0/2,0 mg L

-1

]. Foram avaliadas as médias de (brotos

por explante, altura do caule e diâmetro do caule) e a porcentagem de calogênese, enraiza-

mento explantes, sobrevivência dos explantes e brotos e peso da matéria fresca. Os dados

foram submetidos à análise de variância e as médias comparadas pelo teste de Tukey, 5% de

significância. Não houve diferença significativa entre os tratamentos em relação a formação

de brotos, calos, sobrevivência dos brotos e explantes, altura do caule, diâmetro do caule,

e peso matéria fresta. A suplementação no meio nutritivo com 1,0/0,5 BAP/ANA mg L

-1

promoveu maior formação de brotos. Durante a fase ex vitro 70% dos brotos normais e 0,1%

dos brotos hiperídricos sobreviveram.

Palavras-chave: Cabeça-de-frade; Cultivo ex vitro; Fitorreguladores; Micropropagação.

Abstract — Melocactus sergipensis is a newly discovered species, endemic to the state

of Sergipe and critically endangered. The objective of this research was to establish a protocol

for micropropagation and acclimation of M. sergipensis plants. The experimental setting was

a completely randomized design, with four treatments, 10 replicates and in each experimental

unit an explant was introduced. Explants were obtained from medial sections of the stem of

approximately 5 mm. The nutrient medium was ½ salts of MS supplemented with 30 g L

-1

Bravo Filho, E. S.

; Marlucia, C. Santana

; Paulo, A. A. Santos

;

Adauto, S. Ribeiro

Universidade Federal de Sergipe – UFS, Doutorado em Desenvolvimento e Meio Ambiente. Av. Marechal

Rondon s/n, C.E.P. 49.100-000, São Cristóvão-Sergipe, Brasil.

Universidade Federal de Sergipe – UFS, Departamento de Biologia. Av. Marechal Rondon s/n, C.E.P.

49.100-000, São Cristóvão-Sergipe, Brasil.

Universidade Federal de Sergipe – UFS, Departamento de Ecologia. Av. Marechal Rondon s/n, C.E.P.

49.100-000, São Cristóvão-Sergipe, Brasil.

* Autor para contato:

esbravof@gmail.com

ä Ref. bibliográfica: Bravo Filho, E. S., Marlucia, C. S., Santos, A. A., Ribeiro, A. S. (2018). Multiplicaç

ão in vitro e aclimatização de Melocactus sergipensis. Lilloa 55 (1): 26-36.

ä Recibido: 14/02/18 – Aceptado: 11/05/18

ä URL de la revista: http://lilloa.lillo.org.ar

Creative Commons Atribución – No Comercial – Sin Obra Derivada

4.0 Internacional.

D . O . I . : d o i . o rg /1 0. 30 55 0/ j. li l/ 20 18 .5 5 . 1 / 3

In vitro multiplication and acclimatization of Melocactus sergipensis

Lilloa 55 (1): 26–36, 8 de junio de 2018

sucrose, gelled with 7 g L

-1

of agar and with the following concentrations of phytoregulators:

6-benzylaminopurine (BAP) [0,0; 1,5; 3,0 and 6,0 mg L

-1

] and naphthalenoacetic acid (ANA)

[0,0; 1,5; 3,0 and 6,0 mg L

-1

] and the BAP/ANA combinations [0,0; 1,0/0,5; 2,0/1,0 and

4,0/2,0 mg L

-1

]. The mean values of (shoots per explant, stem height and stem diameter)

and percentage of calogenesis, rooting explants, survival of explants and shoots and weight

of fresh matter were evaluated. Data were submitted to analysis of variance and means were

compared by the Tukey test, 5% significance. There were no significant differences between

treatments in relation to bud formation, callus, shoot and bud survival, stem height, stem

diameter, and cracked weight. Nutritional supplementation with 1,0/0,5 BAP/ANA mg L

-1

promoted a higher shoot formation. During the ex vitro phase, 70% of the normal shoots and

0,1% of the hyperhydric shoots survived.

Keywords: Turk’s cap cactus; ex vitro culture; Phytoregulators; Micropropagation.

INTRODUÇÃO

Estudos sobre propagação são funda-

mentais para a conservação de cactos, es-

pecialmente para espécies que apresentam

limitações reprodutivas a exemplo de dor-

mência, baixos percentuais de germinação,

ausência de brotações, crescimento lento e

que necessitam de vários anos para atingir a

fase reprodutiva (Marchi, 2016). Além disso,

fatores como o extrativismo e a ocupação do

solo para introdução de atividades agropas-

toris e imobiliária vem provocando redução

dos habitats e consequentemente perda de

diversidade genética e pode comprometer

a sobrevivência das espécies [Plano Nacio-

nal Para conservação das Cactaceae [PAN]

(2011); Livro Vermelho da Flora do Brasil

[LVFB] (2013); Marchi, 2016; Silva e Fer-

reira, 2016].

As espécies do gênero Melocactus (LINK

& OTTO - Cactaceae), são popularmente co-

nhecidas por cabeça-de-frade, coroa-de-fra-

de, aleija-cavalo e tamborete-de-sogra (Bra-

vo Filho, Santana, Santos, Ribeiro, 2018).

Gênero composto por 38 espécies distribuí-

das desde a América Central, Caribe, Andes,

Amazônia e Nordeste do Brasil, com exceção

do Maranhão. O Brasil é o centro mundial

de diversidade deste táxon, pois da totali-

dade de espécies que ocorre mundialmente,

23 (60,5%) são nativas do Brasil, e destas

21 (55,2%) são endêmicas (Resende, Lima-

Brito, Santana, 2010; [PAN], (2011); Zappi,

Taylor, Santos, Larocca, 2015).

No estado de Sergipe, Nordeste do Brasil,

ocorrem 26 espécies de Cactaceae e destas,

uma é endêmica, seis exóticas e, apenas, o

gênero Melocactus possui espécies ameaçadas

de extinção, são elas: o Melocactus violaceus

Pfeiff listado com o status de Vulnerável (VU)

segundo Ministério do Meio Ambiente (Mi-

nistério do Meio Ambiente [MMA] (2014),

Braun, Machado, Taylor, Zappi, 2017; Bravo

Filho et al., 2018] e o Melocactus sergipensis

N.P. Taylor & M.V. Meiado, espécie rupícola

descoberta em 2014, é atualmente a única

espécie da família Cactaceae endêmica do

estado e encontra-se Criticamente Ameaça-

da de Extinção (CR) (Taylor, Meiado, Bravo

Filho, Zappi, 2014; Bravo Filho, Ribeiro, So-

bral, 2015; Zappi et al. 2015; Convention on

International Trade in Endangered Species of

Wild Fauna and Flora [CITES], 2016).

O gênero Melocactus apresenta algumas li-

mitações propagativas, a exemplo da ausência

de emissão de brotos e ramificações, reprodu-

ção natural exclusivamente por sementes, cres-

cimento lento, além da fase reprodutiva que

ocorre por volta dos dez anos com o surgimento

do cefálio (Hughes, 2009; Cruz, 2011; Coelho,

Júnior, Nascimento, 2015).

As espécies do gênero Melocactus são co-

letadas indiscriminadamente para abastecer

o comércio de plantas nativas, atividade que

restringe cada vez mais a distribuição das

espécies desse gênero, pois desconsidera o

seu ritmo de resiliência e o alto grau de en-

demismo. As espécies coletadas são utiliza-

das na ornamentação, no místico-cultural,

fabricação de alimentos (doces e ensopados)

e objetos (enchimento para cangalha e almo-

fadas), remédios caseiros e como forragem

para ruminantes (Andrade, 2008; Hughes,

2009; PAN, 2011; Lucena, et al., 2012; San-

tos, Santos, Coutinho, Maoura, Antonio,

E. S. Bravo Filho et al.: Multiplicação in vitro e aclimatização de Melocactus sergipensis

2013; Neto, Castro Filho, Araújo, 2015; Bra-

vo Filho et al., 2018).

Assim, uma alternativa adequada a con-

servação é a micropropagação, visto tratar-se

de recurso genético endêmico e criticamen-

te ameaçado de extinção, uma vez que essa

técnica possibilita a multiplicação de plantas

em grande quantidade, livre de patógenos,

em menor intervalo de tempo, preserva as

características genéticas e pode ser aplicada

em qualquer estação do ano (Resende et al.,

2010; Marchi, 2016; Lopes, Dias, Silveira,

Rodrigues, Pasqual, 2017).

A aplicação de reguladores de crescimen-

to tem sido muito utilizada na cultura de

tecidos vegetais com o intuito de induzir or-

ganogênese, dentre estes, os mais utilizados

são a citocinina, 6-benzilaminopurina (BAP),

para a formação de brotos e auxina, ácido

naftalenoacético (ANA), pelo efeito fisioló-

gico no crescimento vegetal e no enraiza-

mento, ou balanceando os dois reguladores

(Piassi e Piassi, 2016; Silva e Ferreira, 2016).

O objetivo desta pesquisa foi estabelecer um

protocolo para micropropagação e aclimati-

zação de brotos de Melocactus sergipensis.

MATERIAL E MÉTODOS

LocaLização da área de coLeta

A espécie estudada ocorre no município

de Simão Dias (Fig. 1), situado na região Sul

do estado de Sergipe e possui uma área com

aproximadamente 564,7 km

. Confronta-se

ao Norte com os municípios de Pinhão e Pe-

dra Mole, ao Leste com Macambira e Lagar-

to, ao Sul com Riachão do Dantas e Lagarto

e a Oeste com Tobias Barreto, Poço Verde e

o estado da Bahia. A formação vegetal pre-

dominante é a Caatinga, clima semiárido,

temperatura média de 23,7ºC e índice plu-

viométrico médio anual de 845,5 mm (Silva

e Silva, 2006; Secretaria de Estado do Meio

Ambiente e dos Recursos Hídricos [SEMA-

RH], 2012; Instituto Brasileiro de Geografia

e Estatística [IBGE], 2016).

icropropagação

Para indução da multiplicação in vitro de

M. sergipensis foram utilizadas plantas pré-

estabelecidas in vitro com 120 dias após a

germinação, oriundas de sementes obtidas

de matrizes mantidas em casa de vegeta-

ção no Departamento de Biologia/CCBS da

Universidade Federal de Sergipe. As plan-

tas utilizadas possuíam de 0,8-1,2 cm de

comprimento por 4-6 mm de diâmetro (Fig.

2A) e cultivadas em meio MS (Murashige e

Skoog, 1962) com metade da concentração

de sais, suplementado com 30 g L

-1

de saca-

rose e gelificado com 7 g L

-1

de ágar. O pH

foi ajustado para 5,8, inserido 1,5 g L

-1

carvão ativado e autoclavado por 15 min sob

pressão de 1,2 atm. e temperatura 121°C.

Foram avaliadas diferentes concentra-

ções e combinações de reguladores de cres-

cimento adicionados ao meio de cultura. As

seguintes concentrações foram suplemen-

tadas ao meio: 6-benzilaminopurina (BAP:

0,0; 1,5; 3,0 e 6,0 mg L

-1

), ácido naftaleno

acético (ANA: 0,0; 1,5; 3,0 e 6,0 mg L

-1

) e

diferentes balanços de BAP/ANA na propor-

ção 2:1: (0,0; 1,0/0,5; 2,0/1,0 e 4,0/2,0 mg

-1

). O meio nutritivo utilizado na micropro-

pagação foi suplementado com 30 g L

-1

sacarose, geleificado com 7 g L

-1

de ágar, o

pH foi ajustado para 5,8, inserido 1,5 g L

-1

de carvão ativado e autoclavado por 15 mi-

nutos sob pressão de 1,2 atm. e temperatura

de 121°C.

Para obtenção dos explantes, as plantas

foram seccionadas (Fig. 2A), os fragmentos

medianos obtidos (Fig. 2B) foram divididos

longitudinalmente em dois segmentos (Fig.

2C) com aproximadamente 5 mm de com-

primento. Os explantes foram inoculados em

tubos de ensaios contendo 10 mL de meio

de cultura.

eLineaMento experiMentaL

anáLise estatística

O delineamento experimental foi o in-

teiramente casualizado composto de quatro

tratamentos (controle, BAP, ANA, e BAP/

ANA), dez repetições e em cada unidade

experimental foi inserido um explante. A

avaliação foi semanal e, após quatro meses

de cultivo in vitro, foram analisadas as vari-

áveis brotação (MB), altura do caule (MAC),

Lilloa 55 (1): 26–36, 8 de junio de 2018

diâmetro do caule (MDC), indução de calo

(%C), enraizamento explantes (%RE), sobre-

vivência dos explantes (%SE), sobrevivên-

cia dos brotos (%SB)], e peso da matéria

fresca (PMF). Os dados foram submetidos

à análise de variância (ANOVA) e as medias

comparadas através do teste de Tukey a 5%

de significância.

ondição de cuLtivo

As culturas foram mantidas em câmara

incubadora tipo B.O.D., por cinco dias no es-

curo em temperatura controlada de 26 ± 1

ºC. Após esse período os experimentos foram

mantidos em sala de crescimento por mais

115 dias, submetidos a um fotoperíodo de 16

h com intensidade luminosa de 45 µmol m

Fig. 1. Localização do município de Simão Dias no estado de Sergipe, local de ocorrência do

M. sergipensis. Fonte: Modificado do Observatório de Sergipe (2016).

E. S. Bravo Filho et al.: Multiplicação in vitro e aclimatização de Melocactus sergipensis

, fornecida por lâmpadas fluorescentes de

40 W e temperatura média de 28 ± 3ºC.

cLiMatização

Após 120 dias do cultivo in vitro, os

brotos obtidos por meio da micropropaga-

ção, medindo 0,3-2,3 cm de comprimento

por 0,3-1,4 cm de diâmetro e peso médio

de 0,43 g, foram extraídos dos explantes e

submetidos ao processo de aclimatização.

Posteriormente a excisão, os brotos foram

lavados em água corrente e transplantados

para recipientes de polipropileno transpa-

rente com capacidade para 250 mL, conten-

do 170 g de substrato (solo franco siltoso),

umedecido com 20 mL de água e mantidos

em sala de crescimento por mais 30 dias

e, em seguida, transferidos para a casa de

vegetação. Foram utilizados 20 recipientes,

e inseridas três plantas por unidade expe-

rimental. A irrigação foi realizada uma vez

por semana.

RESULTADOS E DISCUSSÃO

MuLtipLicação in vitro de brotos

de M. sergipensis eM diferentes

concentrações de bap

Observa-se por meio da Tab.1, que os

resultados obtidos e comparados a través

do teste de Tukey a 5% de significância, de-

mostram que não houve diferença significa-

tiva entre as variáveis analisadas, porém, o

tratamento composto por 6 mg L

-1

de BAP

apresentou a maior média de brotação em

relação as outras concentrações. Em todos os

tratamentos, os explantes e brotos apresen-

taram taxa de sobrevivência superior a 80%

(Asmar, Resende, Andrade, Morais, Luiz,

2012) e Morais, Asmar, Luiz (2014) obtive-

ram resultados também superiores a 80%

de sobrevivência de brotos de erva cidreira

[Lippia alba (Mill.) N.E. Brown] e hortelã-

pimenta (Mentha x piperita L.) utilizando as

concentrações de 1,5 mg L

-1

e 4 mg L

-1

BAP respectivamente.

A suplementação com BAP em concentra-

ção de 6 mg L

-1

, apesar de não resultar em

diferença significativa, apresentou os maio-

res valores quando comparado às demais va-

riáveis analisadas, a exemplo da média de

brotação (MB) que variou de 0,2-0,6 brotos

(Tab. 1), porcentagem de enraizamento por

explantes (%RE) de 0,20-0,60 (Tab. 1), mé-

dia altura do caule (MAC) de 0,48-0,73 cm

(Tab. 1) e média peso matéria fresca (PMF)

de 0,08-1,05 g (Tab. 1). Em contrapartida,

brotos com maiores médias do diâmetro do

caule (0,70mm) foram obtidos no meio nu-

Fig. 2. Procedimento utilizado na produção de explantes em plantas de M. sergipensis com

120 dias pós-inoculação. A) Remoção dos segmentos apical e basal. B) Corte longitudinal no

segmento mediano. C) explantes prontos para inoculação. Fonte: Bravo Filho (2017).

Lilloa 55 (1): 26–36, 8 de junio de 2018

tritivo suplementado com 3,0 mg L

-1

de BAP

(Tab.1).

Esses resultados divergem dos obtidos

por Asmar et al. (2012), ao pesquisarem a

concentração de hormônio BAP mais ade-

quada para indução da brotação de erva

cidreira. Esses autores concluíram que a su-

plementação com 1,5 mg L

-1

de BAP, estimu-

lou maior número de brotação. No entanto

para a espécie estudada nesta pesquisa, na

concentração de 6 mg L

-1

de BAP (Tab. 1)

obteve-se os maiores valores.

Lopes et al. (2017) estudaram diversas

concentrações de BAP, com intuito de deter-

minar a concentração mais eficaz na proli-

feração e desenvolvimento de brotos pitaia

(Hylocereus undatus – Cactaceae), observa-

ram que a concentração de 1,0 mg L

-1

BAP induziu um maior número de brotos.

Resultados similares foram observados por

Jardim, Sampaio, Costa, Gonçalves, Brandão

(2010), ao estudarem o efeito de diferentes

reguladores de crescimento na regeneração

in vitro de pau-rosa (Aniba rosaeodora Du-

cke), uma vez que, obtiveram maior número

de brotação por explantes na contração de

4 mg L

-1

de BAP.

uLtipLicação in vitro de brotos

de M. sergipensis eM diferentes

concentrações de ana

Os resultados obtidos e comparados atra-

vés do teste de Tukey a 5% de probabilidade

(Tab. 2), demostram que não houve diferen-

ça significativa no número brotação por ex-

plantes, porém, o balanceamento hormonal

de ANA, proporcionou elevação na média

das principais variáveis analisadas. Em to-

das as concentrações, os brotos apresenta-

ram 100% de sobrevivência. Já em relação

a os explantes a taxa de sobrevivência foi

superior a 80% (Tab. 2). Resultados seme-

lhantes foram obtidos por Oliveira, Freire,

Aloufa (2016), ao estudarem proliferação de

brotos de mangabeira, pois obtiveram taxa

de sobrevivências acima de 90% em concen-

tração de 0,5 mg L

-1

de ANA.

A suplementação com o hormônio ANA

na concentração de 1,5 mg L

-1

, promove

maiores resultados quando comparado às

demais variáveis analisadas, a exemplo da

média de brotação (MB) que variou de 0,1-

0,6 brotos (Tab. 2), média da altura do cau-

le (MAC) de 0,48-1,42 cm (Tab. 2) e peso

médio da matéria fresca (PMF) de 0,08-0,60

g (Tab. 2). Em relação à variável porcenta-

gem de enraizamento por explantes (%RE),

a utilização de 3 mg L

-1

propiciou maiores

resultados variando de 0,40-0,80 explante

com raiz (Tab. 2). Estes resultados conver-

gem com os obtidos por Jardim et al. (2010),

em pesquisa sobre a ação dos fitormônios na

indução de brotos de pau-rosa cultivados in

vitro. Porém, nas concentrações de 3 mg L

-1

e 6 mg L

-1

de ANA foi observado decréscimo

no número de brotos de M. sergipensis (Tab.

2) em relação ao controle.

Nesta pesquisa, a medida que elevou-se

a concentração de ANA no meio nutritivo

a partir de 1,5 mg L

-1

, ocorreu decréscimo

na altura do caule (Tab. 2), tais resultados

convergem como os obtidos por Brum, Silva,

Pasqual (2002) e Oliveira et al. (2016), ao

estudarem efeito de diferentes concentrações

de BAP e ANA na multiplicação de brotos in

vitro da figueira (Ficus carica L.) e manga-

beira (Hancornia speciosa Gomes) respectiva-

mente, tais autores observaram decréscimo

na altura dos brotos das espécies estudadas,

sendo a redução inversamente proporcional

às dosagens do hormônio ANA quando com-

parado ao controle.

uLtipLicação in vitro de brotos

de M. sergipensis eM diferentes

concentrações coMbinando bap/ana

Os resultados obtidos e comparados através

do teste de Tukey 5% de probabilidade (Tab.

3), demostram que não houve diferença sig-

nificativa no número brotação por explantes,

porém, houve diferença significativa na média

de enraizamento por explantes. Em todos os

tratamentos os explantes e brotos apresenta-

ram taxa de sobrevivência superior a 80%. Es-

ses resultados convergem com os obtidos por

Morais et al. (2014), ao pesquisarem a ação dos

reguladores de crescimento vegetal no cultivo

in vitro de hortelã-pimenta (Mentha x piperita

E. S. Bravo Filho et al.: Multiplicação in vitro e aclimatização de Melocactus sergipensis

L.), observaram aumento significativo da so-

brevivência dos explantes, principalmente na

concentração de 4 mg L

-1

de BAP, independente

das doses de ANA e GA

A aplicação combinando BAP/ANA (Tab.

3) na proporção (1/0,5 mg L

-1

) apresenta

diferença significativa apenas na variável

porcentagem de enraizamento por explante

(%RE) 0,0-0,80 (Tab. 3), já em relação as

demais variáveis não houve diferença sig-

nificativa, contudo esse balanço hormonal

promoveu maiores resultados na média de

brotação (MB)40-70% (Tab. 3), percentual

de sobrevivência dos explantes (%SE) 80-

100%, média altura do caule (MAC) 0,48-

1,01 cm (Tab. 3), média diâmetro do caule

(MDC) 0,45-0,69 mm e peso matéria fresca

(PMF) 0,08-0,55 g.

Tabela 1. Desenvolvimento de brotos de M. sergipensis in vitro com suplementação de BAP

120 dias após inoculação. Média de brotação (MB), porcentagem de calo (%C), porcentagem

de enraizamento por explantes (%RE), porcentagem de sobrevivência explantes (%SE), porcen-

tagem de sobrevivência brotos (%SB), média altura do caule (MAC), média diâmetro do caule

(MDC) e peso matéria fresca (PMF).

0,50 a

0,30 a

0,20 a

0,60 a

Controle

BAP (1,5 mg L

-1

)

BAP (3,0 mg L

-1

)

BAP (6,0 mg L

-1

)

%C %RE %SE

MAC

(cm)

MDC–

(mm)

PMF

(g)

%SB

0,10 a

0,00 a

0,20 a

0,30 a

0,40 a

0,60 a

0,80 a

0,90 a

0,80 a

1,00 a

0,48 a

0,70 a

0,60 a

0,73 a

0,45 a

0,55 a

0,70 a

0,50 a

0,08 a

0,19 a

0,17 a

1,05 a

Obs.: Letras iguais indicam que, ao nível de 5% de significância, não há diferença entre as médias.

Tabela 2. Desenvolvimento de brotos de M. sergipensis in vitro com suplementação de ANA

120 dias após inoculação. Média de brotação (MB), porcentagem de calo (%C), porcentagem

de enraizamento por explantes (%RE), porcentagem de sobrevivência explantes (%SE), porcen-

tagem de sobrevivência brotos (%SB), média altura do caule (MAC), média diâmetro do caule

(MDC) e peso matéria fresca (PMF).

0,50 a

0,60 a

0,10 a

Controle

ANA (1,5 mg L

-1

)

ANA (3,0 mg L

-1

)

ANA (6,0 mg L

-1

)

%C %RE %SE

MAC

(cm)

MDC–

(mm)

PMF

(g)

%SB

0,10 a

0,00 a

0,20 a

0,40 a

0,80 a

0,40 a

0,80 a

1,00 a

0,48 a

1,42 a

0,70 a

0,60 a

0,45 a

1,05 a

0,50 a

0,08 a

0,60 a

Obs.: Letras iguais indicam que, ao nível de 5% de significância, não há diferença entre as médias.

Tabela 3. Desenvolvimento de brotos de M. sergipensis in vitro com suplementação de BAP/

ANA 120 dias após inoculação. Média de brotação (MB), porcentagem de calo (%C), porcen-

tagem de enraizamento por explantes (%RE), porcentagem de sobrevivência explantes (%SE),

porcentagem de sobrevivência brotos (%SB), média altura do caule (MAC), média diâmetro

do caule (MDC) e peso matéria fresca (PMF).

0,50 a

0,70 a

0,40 a

Controle

BAP/ANA (1/0,5 mg L

-1

)

BAP/ANA (2/1 mg L

-1

)

BAP/ANA (4/2 mg L

-1

)

%C %RE %SE

MAC

(cm)

MDC–

(mm)

PMF

(g)

%SB

0,10 a

0,00 a

0,20 ab

0,80 a

0,00 b

0,80 a

1,00 a

0,48 a

1,01 a

0,50 a

0,97 a

0,45 a

0,69 a

0,50 a

0,60 a

0,08 a

0,55 a

0,06 a

0,44 a

Obs.: Letras iguais indicam que, ao nível de 5% de significância, não há diferença entre as médias.

Lilloa 55 (1): 26–36, 8 de junio de 2018

Resultados semelhantes foram obtidos

por Piassi e Piassi (2016), ao pesquisa-

rem concentrações combinando 1,0/0,05e

2,0/0,1 mgL

-1

de BAP/ANA, na indução do

crescimento dos explantes de alface (Lactu-

ca sativa L.), obtiveram maiores resultados

tanto para o diâmetro caulinar, com maior

quantidade de explantes com presença de

calogênese variando entre 50 e 100% res-

pectivamente.

Resultados divergentes formam obtidos

por Brum et al. (2002), que observaram

decréscimo na brotação de plantas de fi-

gueira (Ficus carica L.) quando comparado

com o controle nos tratamentos contendo

suplementações combinadas dos hormônios

BAP/ANA nas proporções avaliadas, contu-

do à medida que a concentração de ANA foi

aumentada entre0,05 a 2,0 mg L

-1

, ocorreu

crescimento linear das raízes.

esenvoLviMento e acLiMatização das

pLantas obtidas in vitro

Após nove dias de inoculação surgiu as

primeiras radículas (Fig. 3A) e calogênese

(Fig. 3B) em alguns explantes, no vigésimo

terceiro dia iniciar-se o surgimento dos pri-

meiros brotos (Figs. 3C e 3D) em todos os

tratamentos e com maior número de bro-

tação no meio nutritivo suplementado por

1,0/0,5 mg L

-1

de BAP/ANA (Marchi, 2016),

em estudo sobre micropropagação, constatou

diferenciação em brotos axilares de Stepha-

nocereus luetzelburgii após três semanas de

cultivo in vitro.

No tratamento composto por 6 mg L

-1

BAP, 100% dos explantes que emitiram bro-

tos desenvolveram também raízes (Fig. 3E).

Os tratamentos compostos por 1,5 mg L

-1

BAP e 1,0/0,5 mg L

-1

de BAP/ANA induzi-

ram múltiplas brotações (Figs. 3F e 3G).

Para a aclimatização, os brotos foram sec-

cionados dos explantes (Fig. 4A) e introduzi-

dos diretamente no substrato (Fig. 4B) sem

passar pela etapa de enraizamento in vitro,

ocorreu 70% de sobrevivência para os brotos

normais em condição ex vitro (Fig. 4C). Já,

99% dos brotos hiperídricos (Figs. 4D e 4E)

morreram nos primeiros oito dias pós-trans-

plantação para condição ex vitro. Resultados

semelhantes foram obtidos por Resende et

al. (2010) e Marchi (2016), ao aplicarem

o mesmo procedimento na aclimatização

de brotos obtidos in vitro das espécies M.

glaucescens e Stephanocereus luetzelburgii,

respectivamente, pois obtiveram 93 e 100%

de sobrevivência para os brotos normais. En-

quanto Dorneles e trivelin (2011), obtive-

Fig. 3. Desenvolvimento dos brotos de M. sergipensis no intervalo de 120 dias. A) Surgimento

das raízes no explante. B) Explante com calogênese. C) Surgimento dos primeiros brotos. D)

Explante com broto, contudo sem raízes. E) Explante com broto e raiz. F e G) Explantes com

múltiplos brotos. H) Broto normal ao fim das avaliações. Fonte: Bravo Filho (2017).

E. S. Bravo Filho et al.: Multiplicação in vitro e aclimatização de Melocactus sergipensis

Fig. 4. Etapas utilizadas para a aclimatização de plantas de M. sergipensis. A) Explantes com

brotos. B) Brotos removidos dos explantes. C e D) Brotos transplantados para o substrato.

E) Plantas após período de aclimatização. Fonte: Bravo Filho (2017-2018).

ram 53% de sobrevivência na aclimatização

da orquídea Cattleya intermedia Graham ex

Hook (Orchidaceae) obtidas por propagação

in vitro.

CONCLUSÕES

Com base nos resultados, pode-se consi-

derar que a suplementação balanceada de

BAP/ANA no meio de nutritivo na propor-

Lilloa 55 (1): 26–36, 8 de junio de 2018

ção de 1,0/0,5 mg L

-1

proporcionou maior

número de brotação durante a fase de mul-

tiplicação in vitro de M. sergipensis quando

comparado aos demais tratamentos.

Para a aclimatização de brotos de M. ser-

gipensis obtidos in vitro não foi necessária

prévia indução in vitro do desenvolvimento

do sistema radicular, pois 70% dos brotos

que sobreviveram pós-transplantação para

o substrato, todos desenvolveram o sistema

radicular, por outro lado, os brotos hiperídri-

cos 99% morreram nos primeiros oito dias

pós-transplantação para condição ex vitro.

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