N. Niveiro et al.: Hongos agaricoides de las Yungas argentinas. Clave de géneros
74
Niveiro, Nicolás
1*
; Paola Zuliani
1
; Natalia A. Ramirez
1
;
Orlando F. Popoff
1
; Edgardo O. Albertó
2
1
Instituto de Botánica del Nordeste, IBONE (UNNE–CONICET). Sargento Cabral 2131, CC 209, (3400) Co-
rrientes Capital, Argentina.
2
Instituto de Investigaciones Biotecnológicas- Instituto Tecnológico de Chascomús. IIB–INTECH (UNSAM–CO-
NICET). Av. Int. Marino Km 8.2, (7130) Chascomús, Buenos Aires, Argentina.
*
Autor corresponsal: niconiveiro@gmail.com
Recibido: 11/03/14 – Aceptado: 12/06/14
Hongos agaricoides de las Yungas argentinas. Clave
de géneros
Resumen — Niveiro, Nicolás; Paola Zuliani; Natalia A. Ramirez; Orlando F. Popoff; Ed-
gardo O. Albertó. 2014. “Hongos agaricoides de las Yungas Argentinas. Clave de géneros”.
Lilloa 51(1). Las Yungas argentinas constituyen una ecorregión que si bien no abarca más del
2% de la superficie de Argentina, presenta más del 50% de la biodiversidad de nuestro
país. Esto también se ve reflejado en la diversidad de hongos, y principalmente en la de
hongos agaricoides (Basidiomycota). En base a la cantidad de especies de hongos agaricoides
conocidas para las Yungas argentinas, realizamos un listado de los géneros conocidos para
el área, y presentamos una clave para separarlos, resultando un total de 108 géneros.
Palabras clave: Basidiomycota, diversidad fúngica, Singer, Yungas.
Abstract — Niveiro, Nicolás; Paola Zuliani; Natalia A. Ramirez; Orlando F. Popoff; Ed-
gardo O. Albertó. 2014. “Agaricoid fungi from the argentinean Yungas. Key to genera”. Lilloa
51(1). The argentinian Yungas is an eco region that although it reaches less than 2% of the
Argentinian territory; it bears more than 50 % of biodiversity of the country. This also occurs
regarding fungal diversity, mainly concerning the agaricoid fungi (Basidiomycota). Based on
species described from the argentinian Yungas, we made a check list of genera described
for the area. We proposed a key to separate them, resulting in a total of 108 genera.
Keywords: Basidiomycota, fungal diversity, Singer, Yungas forest.
INTRODUCCIÓN
Los hongos agaricoides son un grupo de
hongos artificial, tradicionalmente incluidos
dentro del orden Agaricales (Singer, 1986).
Se caracterizan principalmente por presen-
tar basidiomas carnosos con un himenóforo
lamelado, aunque existen muchos géneros
que escapan de este esquema general. Ac-
tualmente, debido a estudios moleculares y
filogenéticos, el orden Agaricales, en el sen-
tido tradicional (Agaricales sensu lato), ha
sido fuertemente modificado, segregándose
en diversos ordenes: Agaricales, Boletales,
Cantharellales, Gloeophyllales, Hymeno-
chaetales, Polyporales, Russulales (Agari-
comycetidae) y Gomphales (Phallomyceti-
dae), y a su vez, incorporando géneros no
tradicionalmente incluidos dentro de éste
orden, como algunos hongos clavarioides y
Gasteromycetes (Hibbett, 2007). Consecuen-
temente, hasta el momento no existe una
diagnosis morfológica que defina a los Aga-
ricales (Kirk et al., 2008). A pesar de que
actualmente los Agaricales sensu Singer no
forman un grupo natural, el sistema de cla-
sificación presentado por éste autor es un
sistema práctico a la hora de realizar identi-
ficaciones morfológicas, por lo tanto, en este
trabajo se presenta una clave de identifica-
ción de los géneros de Agaricales en el senti-
do tradicional de Singer (Singer, 1986).
LAS YUNGAS EN LA ARGENTINA
Las Yungas se extienden por las laderas
orientales de los Andes desde el norte de
Perú hasta el noroeste de Argentina (Morro-
Lilloa 51 (1): 74–86, 2014
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Lilloa 51 (1): 74–86, 2014
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ne, 2001). En la Argentina, también denomi-
nadas Selva Tucumano-Boliviana o Selva
Tucumano-Oranense (Cabrera, 1994), se ex-
tienden de manera discontinua desde el lími-
te con Bolivia (22° S) hasta el norte de la
provincia de Catamarca (29° S), pasando
por las provincias de Jujuy, Salta y Tucumán
(Brown et al., 2001). Poseen una longitud
de 600 km en sentido norte-sur y menos de
100 km de ancho, cubriendo una superficie
de 52.000 km
2
, y un rango altitudinal entre
400 y 3000 m sobre el nivel del mar (Brown
et al., 2002, 2006). A pesar de que no al-
canzan el 2% de la superficie de nuestro
país, son las que albergan más del 50% de
la biodiversidad (Brown et al., 2002), razón
por la cual son consideradas mundialmente
como áreas de prioridad para la conserva-
ción debido a la gran riqueza de especies y
el alto número de endemismos que presen-
tan. Fueron incorporas en las «Global 200»
por el Fondo Mundial por la Naturaleza
(WWF) (Oslon y Dinerstein, 2002), y dentro
de los «biodiversity hotspot» por Conserva-
tion International (Myers et al., 2000; Mit-
termeier et al., 2005), por lo que conocer la
diversidad de especies que estas presenten es
de fundamental importancia para su conser-
vación.
ANTECEDENTES SOBRE LOS HONGOS
AGARICOIDES DE LAS YUNGAS
La región de las Yungas es una de las de
mayor diversidad de especies de Agaricales
conocidas en la Argentina, habiéndose des-
crito más de 600 especies (Niveiro y Albertó,
2012a-d, 2013a-b, 2014). Spegazzini
(1880a-c, 1881, 1899, 1902, 1909, 1912,
1919, 1926), fue quien inició el estudio de
la micología en la Argentina, describiendo
varias especies para el noroeste argentino.
Pero esta gran diversidad es conocida gra-
cias a que a mediados del siglo XX el Dr.
Rolf Singer estudió ampliamente la región,
publicando varias obras de gran importan-
cia sobre Agaricales de la Argentina (Mueller
y Wu, 1997), principalmente en base a co-
lecciones en las selvas subtropicales (Singer
y Digilio, 1952) y en las regiones templadas
(Singer, 1969). Singer realizó también varios
tratamientos monográficos de las especies
sudamericanas en la serie de trabajos «Mo-
nographs of South America Basidiomycetes,
specially those of east slope of the Andes and
Brazil», los cuales tratan a los géneros Plu-
teus (Singer, 1956, 1958, 1962a), Inocybe
(Singer, 1962a), Oudemansiella, Macrocysti-
dia, Xerula, Mycenella, Pseudohiatula, Cyp-
totrama, Flammulina (Singer, 1964), Xerom-
phalina (Singer, 1965a), Marasmius (Singer,
1965b, 1976) y géneros afines reducidos
(Singer, 1960, 1976), y Tricholoma (Singer,
1966). Además, realizó el tratamiento mo-
nográfico de especies neotropicales de los
géneros Omphalina, Gerronema, Lactocolly-
bia, Macrocystidia, Pleurocollybia, Lulesia,
Armillariella, Arthrosporella y Callistospo-
rium (Singer, 1970a), Phaeocollybia (Singer,
1970b), Marasmiellus, Crepidotus y Simocy-
be (Singer, 1973a), Campanella y Aphyllo-
tus (Singer, 1975), e Hydropus (Singer,
1982); y produjo una serie de trabajos titula-
dos «Diagnoses fungorum novorum agarica-
lium» en los que describe especies nuevas,
principalmente sudamericanas (Singer,
1962b, 1973b, 1989). La mayoría de los es-
pecímenes de las especies descritas por Sin-
ger se encuentran en el herbario de la Fun-
dación Miguel Lillo (LIL), el cual cuenta con
un catálogo de las especies de Agaricales
allí depositadas (Catania, 1998).
No cabe duda de que los trabajos de Sin-
ger son los más significativos para las Yun-
gas argentinas, sin embargo, otros autores
también las han estudiado. Raithelhuber pu-
blicó varios libros respecto a los Agaricales
argentinos, en la serie de libros Flora Myco-
logica Argentina, Hongos I, II, y III (Raithel-
huber, 1987a, 1988, 1991) y Nueva Flora
Micológica Argentina (Raithelhuber, 2004),
donde hace un compendio de todas las espe-
cies descritas y estudiadas anteriormente,
especialmente por Spegazzini, Horak y Sin-
ger, además de algunas incluidas por él.
También realizó tratamientos monográficos
de las especies sudamericanas de los géne-
ros Oudemansiella (Raithelhuber, 1979),
Porpoloma (Raithelhuber, 1980a), Mycena
(Raithelhuber, 1984a-b, 1985a-e), Amanita
N. Niveiro et al.: Hongos agaricoides de las Yungas argentinas. Clave de géneros
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(Raithelhuber, 1985f), Leucocoprinus (Rai-
thelhuber, 1987b), Macrolepiota (Raithelhu-
ber, 1987c), Clitocybe (Raithelhuber, 1990a),
y la serie de trabajos «Agaric flora of South
America» (Raithelhuber, 1990b, 1992a-e,
1994a-c, 1995) donde describe concisamente
la mayoría de los ejemplares registrados
para la Argentina, incluyendo muchas espe-
cies de las Yungas.
Otros autores han contribuido al estudio
de los Agaricales de las Yungas: Becerra et
al. (2002, 2005a, 2005b) y Moser (2001)
estudiaron varias especies micorrícicas de
Agaricales asociadas a los Bosques de Alnus
acuminata Kunth. Guzmán (1978) estudió las
especies de Psilocybe, Heinemman (1993) las
especies del género Agaricus y Horak (1992)
las especies del género Galerina. Reciente-
mente, Niveiro et al. (2014), describieron
una nueva especie del género Pholiota.
En base a la cantidad de especies de Aga-
ricales conocidas para las Yungas argenti-
nas, y a la falta de un trabajo compilatorio,
nos trazamos el objetivo de presentar una
clave de identificación de los géneros de los
hongos agaricoides conocidos para las Yun-
gas argentinas.
MATERIALES Y MÉTODOS
Esta clave incluye todos los géneros de
hongos agaricoides (Agaricales sensu lato)
previamente citados para la Selva de Yungas
hasta Febrero de 2014. Se basa y comple-
menta con la serie de trabajos «Checklist of
the argentinean Agaricales» (Niveiro y Alber-
tó, 2012a-d, 2013a-b, 2014) donde se en-
cuentran todas las especies de Agaricales ci-
tadas para Argentina, con su respectiva dis-
tribución y referencias bibliográficas. Los
diferentes términos específicos utilizados en
la clave están desarrollados, y en algunos
casos ilustrados, en los trabajos de Wright y
Albertó (2002), Digilio y Grassi (1949), Sin-
ger (1986), Kirk et al. (2008), Franco-Mola-
no et al. (2005), Largent (1986), Largent y
Baroni (1988), Vellinga (1988) y Lodge et
al. (2004).
RESULTADOS
Se presenta una clave de identificación
de los 108 géneros de hongos agaricoides
conocidos para las Yungas argentinas (Tabla
1). Ante la dificultad que implica identificar
especies de este grupo, la escasez de especia-
listas y la gran diversidad existente, se reali-
zó esta clave esperando facilitar la labor de
quien quiera iniciarse en la sistemática de
tan diverso y heterogéneo grupo. En este tra-
bajo presentamos la clave de géneros, pre-
tendiendo a futuro realizar una clave para
la identificación de todas las especies descri-
tas para las Yungas. Si bien este trabajo se
acota a un área geográfica restringida, po-
dría ser utilizado para la identificación de
géneros de otros ambientes.
CLAVE DE LOS GÉNEROS DE HONGOS
AGARICOIDES PRESENTES EN LAS
YUNGAS ARGENTINAS
CLAVE PRINCIPAL
1 Esporada y laminillas de coloración negra,
violácea, castaña a castaña ferruginosa ...
..................................................... 2
1’ Esporada y laminillas con tintes blancos,
crémeos, rosados o verdes ................ 4
2 Esporada castaña oscura a negra o negra
con tonos lilas ......................... Clave A
2’ Esporada castaña clara a ferruginosa .... 3
3 Pileipellis formada por un cutis .... Clave B
3’ Pileipellis formada por un verdadero epitelio
............................................. Clave C
4 Himenóforo escaso, no conspicuo. Basidio-
mas maduros generalmente con la superfi-
cie himenial lisa o venosa ........... Clave D
4’ Himenóforo bien desarrollado, lamelado o
poroide, pocas veces venoso ............... 5
5 Trama himenoforal bilateral ......... Clave E
5’ Trama himenoforal regular o irregular, pero
nunca bilateral ................................. 6
6 Basidiomas quebradizos, trama heterómera
(compuesta de hifas y esferocistos) ........
............................................. Clave F
6’ Basidiomas no quebradizos. Trama homó-
mera ............................................. 7
7 Esporas angulares. Esporada rosada ........
............................................ Clave G
7’ Esporas lisas u ornamentadas, pero nunca
esporada rosada con esporas angulares ...
..................................................... 8
Lilloa 51 (1): 74–86, 2014
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Tabla 1. Listado alfabético de los géneros de Agaricales (Basidiomicetes) citados para las Yun-
gas Argentinas. Entre paréntesis se expresa el número de especies conocidas para las Yungas.
Agaricus L. (17)
Agrocybe Fayod (13)
Amanita Pers. (9)
Amparoina Singer (2)
Armillaria (Fr.) Staude (2)
Arrhenia Fr. (4)
Arthrosporella Singer (1)
Baeospora Singer (1)
Bolbitius Fr. (2)
Callistosporium Singer (1)
Calocybe Kühner ex Donk (1)
Calyptella Quél. (1)
Campanella Henn. (4)
Cantharellus Adans. ex Fr.(1)
Chlorophyllum Massee (2)
Clitocybe (Fr.) Staude (13)
Clitopilus (Fr. ex Rabenh.) P. Kumm. (9)
Collybia (Fr.) Staude (10)
Conocybe Fayod (31)
Coprinellus P. Karst. (2)
Coprinopsis P. Karst. (1)
Coprinus Pers. (2)
Cortinarius (Pers.) Gray (2)
Crepidotus (Fr.) Staude (30)
Crinipellis Pat. (17)
Cyptotrama Singer (1)
Cystoagaricus Singer (2)
Cystolepiota Singer (3)
Dactylosporina (Clémençon) Dörfelt (1)
Entoloma (Fr. ex Rabenh.) P. Kumm. (3)
Flammulaster Earle (2)
Flammulina P. Karst. (2)
Galerella Earle (1)
Galerina Earle (15)
Gamundia Raithelh. (1)
Gerronema Singer (6)
Gloiocephala Massee (5)
Gymnopilus P. Karst. (5)
Gymnopus (Pers.) Roussel (4)
Hemimycena Singer (1)
Hohenbuehelia Schulzer (14)
Hydropus Kühner ex Singer (10)
Hygrocybe (Fr.) P. Kumm. (3)
Hygrophorus Fr. (1)
Hypholoma (Fr.) P. Kumm. (1)
Inocybe (Fr.) Fr. (1)
Kuehneromyces Singer & A.H. Sm. (1)
Laccaria Berk. & Broome (1)
Lactarius Pers. (3)
Lactocollybia Singer (2)
Lentinellus P. Karst. (2)
Lentinula Earle (1)
Lentinus Fr. (6)
Lepiota (Pers.) Gray (7)
Lepista (Fr.) W.G. Sm. (4)
Leucoagaricus Locq. ex Singer (5)
Leucocoprinus Pat. (3)
Leucopaxillus Boursier
Lulesia Singer (1)
Lyophyllum P. Karst. (1)
Macrocystidia Joss. (1)
Macrolepiota Singer (3)
Marasmiellus Murrill (27)
Marasmius Fr. (62)
Melanoleuca Pat. (4)
Melanomphalia M. P. Christ. (2)
Melanotus Pat. (4)
Micromphale Gray (1)
Micropsalliota Höhn. (1)
Mycena (Pers.) Roussel (23)
Mycenella (J. E. Lange) Singer (1)
Naucoria (Fr.) P. Kumm. (4)
Neoclitocybe Singer (2)
Neopaxillus Singer (1)
Omphaliaster Lamoure (1)
Omphalina Quél. (10)
Oudemansiella Speg. (1)
Pachylepyrium Singer (1)
Panaeolus (Fr.) Quél. (3)
Panellus P. Karst. (4)
Panus Fr. (6)
Paxillus Fr. (1)
Phaeomarasmius Scherff. (1)
Pholiota (Fr.) P. Kumm. (8)
Pholiotina Fayod (5)
Physalacria Peck (3)
Pleurocybella Singer (1)
Pleurotus (Fr.) P. Kumm. (4)
Pluteus Fr. (52)
Pouzarella Mazzer (8)
Psathyrella (Fr.) Quél. (6)
Psilocybe (Fr.) P. Kumm. (14)
Resupinatus Nees ex Gray (3)
Rhodocollybia Singer (2)
Rhodocybe Maire (7)
Rickenella Raithelh. (1)
Russula Pers. (2)
Schizophyllum Fr. (1)
Simocybe P. Karst. (7)
Stropharia (Fr.) Quél. (4)
Tephrocybe Donk (2)
Tetrapyrgos E. Horak (3)
Tricholoma (Fr.) Staude (1)
Trogia Fr. (1)
Tubaria (W. G. Sm.) Gillet (2)
Volvariella Speg. (4)
Xeromphalina Kühner & Maire (3)
Xerula Maire (1)
N. Niveiro et al.: Hongos agaricoides de las Yungas argentinas. Clave de géneros
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8 Basidios elongados hasta 6 veces su an-
cho. Laminillas decurrentes, gruesas, cero-
sas, generalmente distantes. Basidiomas
generalmente con colores llamativos .......
............................................. Clave H
8’ Basidios claviformes, no excepcionalmente
elongados. Laminillas libres a decurrentes,
membranáceas, apretadas a distantes (o
hasta reducidas o himenóforo poroide), nun-
ca gruesas ni cerosas. Basidiomas con
coloración variable ............................ 9
9 Esporas con pared compuesta u ornamen-
tada, generalmente con poro germinativo.
Elementos del velo presentes y bien desa-
rrollados .................................. Clave I
9’ Esporas con pared delgada, raramente
compuesta, sin poro germinativo. Elemen-
tos del velo ausentes, o si presentes poco
desarrolados ................................. 10
10 Basidios con granulación siderófila ...........
............................................ Clave J
10’ Basidios sin granulación siderófila ....... 11
11 Esporas amiloides .................... Clave K
11’ Esporas inamiloides o dextrinoides ...... 12
12 Estípite excéntrico, lateral o nulo ... Clave L
12 Estípite central ............................... 13
13 Pileipellis himeniforme, epitelial, formada por
elementos rameales, hifas diverticuladas o
con pelos dextrinoides ............... Clave M
13’ Pileipellis sin esas estructuras, generalmen-
te en un cutis ............................... 14
14 Laminillas decurrentes, subdecurrentes o
adnatas con un diente decurrente .........
............................................. Clave N
14’ Laminillas anexas, adnatas o sinuadas .....
............................................ Clave O
— CLAVE A —
GÉNEROS CON ESPORADA CASTAÑA OSCURA
A NEGRA O NEGRA VIOLÁCEA
1 Esporada negra liliácea a castaño oscura
(esporas muy pigmentadas) ................ 2
1’ Esporada castaño acanelado a ferruginosa
(esporas méleas) ........................... 13
2 Píleo plicado estriado (coprinoides). Lamini-
llas delicuescentes o subdelicuescentes ....
..................................................... 3
2’ Píleo variable pero no plicado estriado. La-
minillas no delicuescentes .................. 5
3 Laminillas subdelicuescentes. Basidiomas
sin velo. Pileipellis con pelos hialinos erectos
(pileocistidios) ...................... Coprinellus
3’ Laminillas delicuescentes. Basidiomas con
restos de velo. Pileipellis variable ......... 4
4 Píleo cubierto por escamas flocosas firme-
mente sujetas a la superficie del píleo ....
............................................. Coprinus
4’ Píleo cubierto por escamas flocosas fácil-
mente desprendibles de la superficie del
píleo ................................. Coprinopsis
5 (2) Laminillas negras a purpúreas oscuras,
moteadas o variegadas .......... Panaeolus
5’ Laminillas no moteadas en la madurez ... 6
6 Pileipellis celular ................... Psathyrella
6’ Pileipellis en un cutis .......................... 7
7 Basidiomas con velo bien desarrollado, ge-
neralmente con anillo en el estípite y esca-
mas o fibrillas en el píleo. Pileipellis en un
cutis. Pleurocistidios generalmente ausen-
tes ................................................. 8
7’ Basidiomas con velo variable, pero nunca
muy desarrollado, con o sin anillo. Pileipellis
generalmente en un ixocutis. Pleurocistidos
generalmente presentes, muchas veces
como crisocistidios .......................... 10
8 Píleo con escamas espinosas compuestas
de esferocistos subisodiamétricos ...........
...................................... Cystoagaricus
8’ Píleo glabro, fibriloso, si es escamoso, no
formado por esferocistos .................. 9
9 Basidiomas pequeños, con contexto delga-
do. Queilocistidios cilíndricos elongados con
ápice capitado o clavado ..... Micropsalliota
9’ Basidiomas pequeños a grandes, general-
mente con contexto carnoso. Queilocistidios
vesiculosos, fusiformes o ausentes ..........
............................................ Agaricus
10 (7) Crisocistidios presentes. Basidiomas
medianos a grandes ........................ 11
10 Crisocistidios ausentes. Basidiomas peque-
ños a medianos .............................. 12
11 Píleo más o menos viscoso, variando de
colores pero raramente anaranjado o roji-
zo, velo a menudo formando un anillo mem-
branáceo, nunca lignícola. Pileipellis sin un
estrato subcelular por debajo ... Stropharia
11’ Píleo no viscoso, generalmente con coloras
llamativos, amarillos, anaranjados, rojizos,
velo cortinarioide, generalmente cespitoso
sobre madera. Pileipellis con una subpellis
subcelular ............................ Hypholoma
12 Estípite excéntrico o lateral, o central pero
curvo y más corto que el diámetro del pí-
leo ..................................... Melanotus
12’ Estípite central y más largo que el diámetro
del píleo ................................ Psilocybe
13 (1) Pileipellis himeniforme o celular. Píleo
convexo, cónico a campanulado, higrófano.
Estípite muy frágil y delicado. Esporas deco-
lorándose en ácido sulfúrico ..... Psathyrella
13 Pileipellis en un cutis o ixocutis. Píleo y es-
típite variable. Esporas no decolorándose
en ácido sulfúrico ............................ 14
14 Píleo fuertemente higrófano, margen trans-
lúcido, estriado .............. Kuehneromyces
14 Píleo raramente higrófano, margen no es-
triado ........................................... 15
15 Pleurocistidios presentes, a veces como
Lilloa 51 (1): 74–86, 2014
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crisocistidios. Esporas castaño amarillentas
con paredes delgadas a levemente engro-
sadas. Píleo viscoso, o escamoso, o am-
bas. Pileipellis formada por hifas gelificadas
.............................................. Pholiota
15 Pleurocistidios ausentes. Esporas castaño
oscuras a ferruginosas con paredes muy
engrosadas. Píleo liso y seco. Pileipellis for-
mada por hifas no gelificadas ................
..................................... Pachylepyrium
— CLAVE B —
GÉNEROS CON ESPORADA CASTAÑA CLARA
A FERRUGINOSA CON LA PILEIPELLIS
FORMADA POR HIFAS O ELEMENTOS
ELONGADOS, HIFAS POSTRADAS EN UN
CUTIS A HIFAS ERECTAS FORMANDO UNA
TRICODERMIS
1 Estípite ausente o lateral y rudimentario ...
........................................ Crepidotus
1’ Estípite central o excéntrico, bien desarro-
llado .............................................. 2
2 Basidiomas medianos a grandes, clitocibioi-
des con laminillas decurrentes y fácilmente
desprendibles del contexto .................. 3
2’ Basidiomas variables en tamaño, laminillas
decurrentes o no, que no se separan fácil-
mente del contexto .......................... 4
3 Esporas lisas ........................... Paxillus
3’ Esporas ornamentadas .......... Neopaxillus
4 Esporada castaño arcillosa ................. 5
4’ Esporada castaño ocrácea a ferruginosa ...
.................................................... 9
5 Pileipellis tricodermal formada por hifas
suberectas ............................ Naucoria
5’ Pileipellis en un cutis formado por hifas ra-
dialmente dispuestas ......................... 6
6 Esporas generalmente angulares nodulosas
o espinosas, ocasionalmente lisas. Cistidios
metuloides a veces presentes ..... Inocybe
6’ Esporas nunca angulares nodulosas o espi-
nosas. Cistidios metuloides ausentes .... 7
7 Esporas lisas ........................ Simocybe
7’ Esporas verrugosas .......................... 8
8 Basidiomas tricholomatoides. Píleo viscoso,
margen recto ........................ Hebeloma
8’ Basidiomas paxilloides a collibioides o mice-
noides. Píleo seco, margen al principio in-
curvado a involuto ............ Melanomphalia
9 (4) Esporas formadas por una pared sim-
ple, colapsando rápidamente ............. 10
9’ Esporas formadas por una doble capa en
la pared, no colapsando fácilmente ..... 11
10 Fíbulas presentes ..................... Tubaria
10’ Fíbulas ausentes ...................... Galerina
11 Esporas lisas, pileipellis formada por hifas
suberectas incrustadas .....................
................................. Phaeomarasmius
11 Esporas finamente rugosas, o si presenta
esporas lisas con la pileipellis formada por
hifas postradas .............................. 12
12 Asociado a ectomicorrizas ...... Cortinarius
12 Humícolas o lignícolas, no asociado a ecto-
micorrizas ..................................... 13
13 Esporas finamente rugosas, sin pliegue su-
prahilar (“suprahilar plage”). Xilófagos. Píleo
generalmente carnoso, no higrófano ........
......................................... Gymnopilus
13’ Esporas lisas, o si rugosas con la región
suprahilar lisa. Humícolas, más raramente
xilófagos. Píleo más delicado, higrófano ....
............................................. Galerina
— CLAVE C —
GÉNEROS CON ESPORADA CASTAÑA CLARA
A FERRUGINOSA CON LA PILEIPELLIS
FORMADA POR ELEMENTOS GLOBOSOS
FORMANDO UNA CISTODERMIS, EPITELIO O
HIMENODERMIS
1 Esporada castaño tabaco, castaño chocola-
te o más oscura. Basidiomas medianos a
grandes, generalmente carnosos ......... 2
1’ Esporada castaña clara a ferruginosa. Ba-
sidiomas pequeños a medianos, delicados,
frágiles .......................................... 3
2 Píleo glabro, a veces areolado en condicio-
nes secas ............................. Agrocybe
2’ Píleo con escamas espinosas compuestas
de esferocistos subisodiamétricos .........
..................................... Cystoagaricus
3 Píleo viscoso a glutinoso. Queilocistidios le-
vemente capitados ................... Bolbitius
3’ Píleo seco. Queilocistidios variables ....... 4
4 Píleo granuloso a granuloso flocoso, no es-
triado ............................. Flammulaster
4’ Píleo glabro .................................... 5
5 Píleo plicado estriado, plicado sulcado o sul-
cado, al menos cuando joven. Queilocistidios
ampuliformes ......................... Galerella
5’ Píleo translúcidamente estriado a subsulca-
do cuando húmedo o completamente liso.
Queilocistidios variables ..................... 6
6 Queilocistidios fuertemente capitados .....
........................................... Conocybe
6’ Queilocistidios no capitados ................ 7
7 Queilocistidios con base ensanchada y un
ápice largo y estrecho ............. Naucoria
7’ Queilocistidios de forma distinta .............
.......................................... Pholiotina
N. Niveiro et al.: Hongos agaricoides de las Yungas argentinas. Clave de géneros
80
— CLAVE D —
GÉNEROS CON HIMENÓFORO LISO
O VENOSO
1 Basidiomas con alguna parte gelificada, hi-
menóforo venoso, fuertemente anastomosa-
do .................................... Campanella
1’ Basidiomas sin partes gelificadas ......... 2
2 Superficie estéril del basidioma himeniforme
......................................... Physalacria
2’ Superficie estéril del basidioma no himeni-
forme ............................................. 3
3 Basidiomas pileados o espatulados, con hi-
menóforo formado por venas ..... Arrhenia
3’ Basidiomas cifeloides, himenóforo liso .....
............................................ Calyptella
— CLAVE E —
GÉNEROS CON TRAMA HIMENOFORAL
BILATERAL
1 Laminillas decurrentes, gruesas, cerosas,
generalmente distantes, basidios elongados
hasta 6 veces su ancho ...... Hygrophorus
1’ Laminillas libres, delgadas, membranáceas,
apretadas a distantes, basidios no elonga-
dos ................................................ 2
2 Trama himenoforal divergente. Estípite con
volva y anillo. Esporada blanca a rosada.
Esporas amiloides o inamiloides ... Amanita
2’ Trama himenoforal convergente. Estípite
con o sin volva, anillo ausente. Laminillas y
esporada rosada. Esporas inamiloides ... 3
3 Estípite con volva ................... Volvariella
3’ Estípite sin volva ....................... Pluteus
— CLAVE F —
GÉNEROS CON TRAMA HETERÓMERA
1 Con látex u otro líquido que es exudado al
cortar o dañar el basidioma. Trama hime-
noforal sin esferocistos ............ Lactarius
1’ Sin látex u otro líquido que es exudado al
cortar o dañar el basidioma. Trama hime-
noforal con esferocistos ............. Russula
— CLAVE G —
GÉNEROS CON ESPORADA ROSADA Y
ESPORAS ANGULARES
1 Esporas angulares a subangulares en vista
polar únicamente, longitudinalmente estria-
das en vista lateral ........................... 2
1’ Esporas angulares en todas sus caras ....
..................................................... 3
2 Esporas elipsoidales a fusiformes con 6-10
costillas longitudinales .............. Clitopilus
2’ Esporas subglobosas a ovo-elipsoidales, sin
costillas regulares, verrugosas ...............
.......................................... Rhodocybe
3 Píleo fibroso escamoso, base del estípite
fuertemente estrigosa ............. Pouzarella
3’ Píleo glabro, higrófano, base del estípite no
marcadamente estrigosa .......... Entoloma
— CLAVE H —
GÉNEROS CON BASIDIOS ELONGADOS
HASTA 6 VECES SU ANCHO, CON
LAMINILLAS GRUESAS Y CEROSAS
1 Trama himenoforal divergente ...............
....................................... Hygrophorus
1’ Trama himenoforal paralela ................. 2
2 Esporas lisas ........................ Hygrocybe
2’ Esporas ornamentadas ...................... 3
3 Pileipellis con hifas incrustadas con pigmen-
tos abundantes. Especies templado frías ...
....................................... Omphaliaster
3’ Pileipellis sin pigmentación, o si presente
exclusivamente vacuolares. Especies tropi-
cales ................................. Hygroaster
— CLAVE I —
GÉNEROS DE ESPORADA BLANCA, CON
ELEMENTOS DEL VELO PRESENTES Y BIEN
DESARROLLADOS
1 Esporas con paredes simples, delgadas,
hialinas, sin poro germinativo en el ápice ...
..................................................... 2
1’ Esporas con paredes gruesas y estratifica-
das ............................................... 4
2 Laminillas anexas a adnatas con un peque-
ño diente decurrente, esporas amiloides o
inamiloides, nunca dextrinoides ..............
........................................ Cystoderma
2’ Laminillas libres, esporas dextrinoides ... 3
3 Pileipellis formada por un epitelio de esfero-
cistos, nunca himeniforme. Superficie del
píleo granulosa o escamosa, con elemen-
tos que se desprenden fácilmente al tacto
........................................ Cystolepiota
3’ Pileipellis variable, desde un cutis de hifas
postradas a himeniforme, pero nunca con
esferocistos. Superficie del píleo variable,
pero generalmente sin elementos que se
desprenden fácilmente al tacto .... Lepiota
4 Basidiomas grandes, generalmente mayo-
res a 10 cm diam, pie con anillo complejo,
generalmente doble, margen del píleo no
estriado, fíbulas presentes ................. 5
4’ Basidiomas más pequeños, generalmente
menores a 10 cm diam., anillo general-
mente simple, membranáceo, margen del
píleo estriado o no, fíbulas ausentes ..... 6
Lilloa 51 (1): 74–86, 2014
81
5 Esporada verde o blanca. Estípite glabro.
Esporas con poro germinativo causado por
la depresión del episporio ... Chlorophyllum
5’ Esporada blanca o crémea, nunca verde.
Estípite con bandas escamosas o fibrillo-
sas. Esporas con poro germinativo causa-
do por interrupción del episporio ............
....................................... Macrolepiota
6 Basidiomas delicados, margen sulcado es-
triado ............................ Leucocoprinus
6’ Basidiomas carnosos, margen no estriado
..................................... Leucoagaricus
— CLAVE J —
GÉNEROS CON BASIDIOS CON
GRANULACIÓN SIDERÓFILA
1 Pileipellis en una dermis. Píleo con colores
llamativos .............................. Calocybe
1’ Pileipellis en un cutis. Píleo de colores más
pálidos ........................................... 2
2 Basidiomas cespitosos, dispersos o grega-
rios, estípite carnoso ............. Lyophyllum
2’ Basidiomas no cespitosos, estípite cartilagi-
noso y frágil ........................ Tephrocybe
— CLAVE K —
GÉNEROS CON ESPORAS AMILOIDES
1 Himenóforo poroide ................... Panellus
1’ Himenóforo lamelado ......................... 2
2 Esporas verrugosas o punteadas ......... 3
2’ Esporas lisas .................................. 5
3 Basidiomas pleurotoides, estípite lateral o
ausente. Margen de las laminillas erodados
......................................... Lentinellus
3’ Basidiomas no pleurotoides. Margen de las
laminillas entero ............................... 4
4 Esporas verrugosas con “plage”. Fíbulas
ausentes .......................... Melanoleuca
4’ Esporas verrugosas, pero nunca con “pla-
ge”. Fíbulas presentes ......... Leucopaxillus
5 (2’) Velo presente, formando un anillo sim-
ple o doble en el estípite .................... 6
5’ Elementos del velo ausentes, o no dejando
remanentes .................................... 9
6 Pileipellis compuesta por esferocistos ......
........................................ Cystoderma
6’ Pileipellis en un cutis ......................... 7
7 Artrosporas presentes en la superficie del
píleo y estípite ................. Arthrosporella
7’ Artrosporas ausentes ........................ 8
8 Rizomorfos negros ................. Armillaria
8’ Rizomorfos blancos .................... Lulesia
9 (5’) Base del estípite con abundante tomen-
to estrigoso ferrugíneo ....... Xeromphalina
9’ Base del estípite sin abundante tomento ...
................................................... 10
10 Basidiomas grandes, clitocibioides ..........
....................................... Leucopaxillus
10 Basidiomas generalmente pequeños, mice-
noides o collibioides ........................ 11
11 Superficie del píleo viscosa o glutinosa .....
................................ Mycena pro parte
11 Superficie del píleo seca .................. 12
12 Basidiomas collibioides, laminillas delgadas y
densamente apretadas. Subpellis celular
ausente .............................. Baeospora
12 Basidiomas micenoides, laminillas modera-
damente anchas a anchas. Subpellis celular
generalmente presente .................... 13
13 Estípite pruinoso a flocoso, al menos en el
ápice. Pileocistidios vesiculosos ..............
............................................ Hydropus
13 Estípite pruinoso o glabro en el ápice. Ele-
mentos de la pileipellis diverticulados .....
................................ Mycena pro parte
— CLAVE L —
GÉNEROS CON ESPORADA BLANCA O
ROSADA, CON ESTÍPITE EXCÉNTRICO,
LATERAL O NULO
1 Himenóforo formado por pliegues longitudi-
nales, semejantes a laminillas Cantharellus
1’ Himenóforo formado por verdaderas lamini-
llas ............................................... 2
2 Laminillas hendidas longitudinalmente .....
...................................... Schizophyllum
2’ Laminillas no hendidas ....................... 3
3 Basidiomas grandes, carnoso a coriáceos
..................................................... 4
3’ Basidiomas de pequeños a grandes, frágiles
a poco carnosos .............................. 7
4 Basidiomas carnosos .............. Pleurotus
4’ Basidomas coriáceos ......................... 5
5 Margen de las laminillas dentado. Sistema
hifal monomítico ...................... Lentinula
5’ Margen de las laminillas entero, o dentado
en ejemplares viejos. Sistema hifal dimítico
o trimítico ...................................... 6
6 Sistema hifal dimítico con hifas esqueleta-
les, no ramificadas. Pseudoesclerocios ge-
neralmente presentes ................. Panus
6’ Sistema hifal trimítico, con hifas esqueleto-
ligadoras. Pseudoesclerocio ausente ........
............................................. Lentinus
7 (3) Trama gelatinizada ....................... 8
7’ Trama nunca gelatinizada ................. 10
8 Himenóforo con laminillas, generalmente
poco desarrolladas, fuertemente anastomo-
sadas ................................ Campanella
8’ Himenóforo no anastomosado .............. 9
9 Cistidios metuloides presentes ..............
..................................... Hohenbuehelia
9’ Cistidios metuloides ausentes Resupinatus
N. Niveiro et al.: Hongos agaricoides de las Yungas argentinas. Clave de géneros
82
10 (7) Estípite lateral o ausente. Basidiomas
pleurotoides ..................... Pleurocybella
10 Estípite excéntrico. Píleo infundibuliforme o
convexo ........................................ 11
11 Esporas lisas, esporada blanca a crémea
............................................ Clitocybe
11’ Esporas asperuladas. Esporada rosada
ocrácea ................................... Lepista
— CLAVE M —
GÉNEROS DE ESPORADA BLANCA, CON
ESTÍPITE CENTRAL Y PILEIPELLIS VARIABLE:
FORMADA POR ESTRUCTURAS
HIMENIFORMES, RAMEALES, HIFAS
DIVERTICULADAS O PELOS DEXTRINOIDES
1 Alguna parte del píleo con hifas gelatiniza-
das ............................................... 2
1’ Hifas del basidioma no gelatinizadas ..... 4
2 Estructuras microscópicas (esporas, cisti-
dios, basidios) llamativamente grandes ...
..................................... Oudemansiella
2’ Estructuras microscópicas (esporas, cisti-
dios, basidios) normales, no llamativamente
grandes ......................................... 3
3 Basidiomas putrescentes, píleo viscoso, hi-
fas del contexto no gelatinizadas, estípite
velutino, pileipellis formada por elementos
globosos ............................ Flammulina
3’ Basidiomas marcescentes, píleo húmedo o
lubricoso, hifas del contexto gelatinizadas,
estípite glabro, pruinoso o pubescente,
pero no velutino, pileipellis en un cutis,
ocasionalemente con elementos diverticula-
dos ................................. Micromphale
4 Dermatocistidios y cistidios himeniales lan-
ceolados, llamativamente grandes ...........
...................................... Macrocystidia
4’ Sin cistidios lanceolados llamativamente
grandes .......................................... 5
5 Píleo cubierto por pelos dextrinoides .....
........................................... Crinipellis
5’ Píleo sin pelos dextrinoides ................. 6
6 Pileipellis formada por estructuras rameales
o hifas diverticuladas ......................... 7
6’ Pileipellis sin estructuras rameales .... 14
7 Basidiomas micenoides, tendiendo a gaste-
roides ................................ Amparoina
7’ Basidiomas variables, pero no tendiendo a
gasteroides ..................................... 8
8 Esporas tetraédricas ........... Tetrapyrgos
8’ Esporas no tetraédricas .................... 9
9 Basidiomas marcescentes, reviviscentes al
rehidratarse ................................. 10
9’ Basidiomas putrescentes, no reviviscente
................................................... 11
10 Rizomorfos negros presentes. Estipitipellis
formada por hifas dextrinoides .............
.......................... Marasmius pro parte
10’ Rizomorfos negros ausentes. Estipitipellis
inamiloide .......... Marasmiellus pro parte
11 (9’) Basidiomas clitocibioides ................
...................................... Neoclitocybe
11 Basidiomas collibioides, omfalinoides o mi-
cenoides ....................................... 12
12 Estípite inserto en el sustrato ................
......................... Marasmiellus pro parte
12’ Estípite no inserto en el sustrato ....... 13
13 Esporas globosas, pileipellis compuesta por
elementos globosos diverticulados ..........
............................. Mycenella pro parte
13 Esporas elipsoidales, pileipellis compuesta
por elementos cilíndricos a claviformes, di-
verticulados ............... Mycena pro parte
14 (6’) Esporas globosas ..................... 15
14’ Esporas elipsoidales a fusiformes ....... 18
15 Pileipellis formada por hifas diverticuladas.
Esporas pequeñas a medianas .............
............................ Mycenella pro parte
15’ Pileipellis himeniforme. Esporas llamativa-
mente grandes .............................. 16
16 Esporas espinosas ........... Dactylosporina
16 Esporas lisas ................................ 17
17 Basidiomas creciendo directamente sobre
madera. Estípite liso a escamoso, sin pileo-
cistidios .......................... Oudemansiella
17 Basidiomas creciendo en el suelo, general-
mente asociados a madera semienterrada
en descomposición. Estípite piloso, con pi-
leocistidios largos ....................... Xerula
18 (14’) Pileipellis en un epitelio o una empali-
zada. Píleo y estípite generalmente granulo-
sos ............................................. 19
18 Pileipellis y píleo diferentes ............... 20
19 Pileipellis himeniforme. Píleo amarillo .......
........................................ Cyptotrama
19’ Pileipellis en un epitelio. Píleo de otros colo-
res .................................. Cystoderma
20 (18’) Esporas fusiformes, largas. Basidio-
mas con menos de 5 mm diám ..............
....................................... Gloiocephala
20’ Esporas elipsoidales. Píleo generalmente
mayor a 5 mm diám. ..........................
.......................... Marasmius pro parte
— CLAVE N —
GÉNEROS DE ESPORADA BLANCA CON
ESTÍPITE CENTRAL, PILEIPELLIS NO
HIMENIFORME Y LAMINILLAS
DECURRENTES A SUBDECURRENTES O
ADNATAS CON UN PEQUEÑO DIENTE
DECURRENTE
1 Laminillas cerosas, gruesas, rosadas o liliá-
ceas. Esporas asperuladas o lisas, cilíndri-
cas, mayores a 10 µm ............ Laccaria
Lilloa 51 (1): 74–86, 2014
83
1’ Laminillas y esporas diferentes ........... 2
2 Basidiomas micenoides a collibioides. Píleo
cónico, convexo o campanulado ........... 3
2’ Basidiomas omfalinoides, collibioides a clito-
cibioides. Píleo convexo a infundibuliforme ...
.................................................... 5
3 Trama dextrinoide ....... Mycena pro parte
3’ Trama inamiloide .............................. 4
4 Basidiomas putrescentes, con olor fétido,
principalmente al romper el basidioma ...
..................................... Micromphale
4’ Basidiomas marcescentes, olor ausente ...
....................................... Hemimycena
5 Gloeocistidios y laticíferos presentes en la
trama ........................................... 6
5’ Gloeocistidios y laticíferos ausentes ..... 7
6 Esporada blanca. Basidiomas blancos ...
...................................... Lactocollybia
6’ Esporada rosada. Basidiomas de otros co-
lores ............................. Macrocystidia
7 Basidiomas clitocibioides (basidiomas gene-
ralmente grandes, mayores a 20 mm
diám., con estípite carnoso) ............... 8
7’ Basidiomas omfalinoides (basidiomas peque-
ños, generalmente menor a 20 mm diám.,
con estípite cartilaginoso) ................... 9
8 Pileipellis tricodermal, esporas pequeñas ...
.............................................. Lulesia
8’ Pileipellis en un cutis, esporas más gran-
des .................................... Clitocybe*
9 Pleuro y queilocistidios presentes. Basidio-
mas generalmente de colores llamativos
(amarillo, anaranjado) ............ Rickenella*
9’ Cistidios ausentes. Basidiomas de colores
variables ....................................... 10
10 Basidiomas tendiendo a cartilaginosos, ge-
neralmente de colores llamativos ..........
............................................. Trogia*
10’ Basidiomas más carnosos, de coloración
variable ........................................ 11
11 Pigmentos intraparietales y a veces incrus-
tantes, generalmente amarillentos o ana-
ranjados ............................. Omphalina*
11 Pigmentos intracelulares o completamente
ausentes ...................................... 12
12 Basidiomas de colores amarillentos o ana-
ranjados ........................... Gerronema*
12’ Basidiomas crémeos a grisáceos, poco
coloreados ........................... Clitocybe*
(*) Los generos Clitocybe, Omphalina,
Gerronema, Rickenella y Trogia son muy cer-
canos y su delimitación aún no está del todo
clarificada. Generalmente, las especies des-
critas para alguno de estos géneros se en-
cuentran sinonimizadas a alguno de los
otros géneros, por lo que para identificar
una especie de este complejo de géneros se
recomienda tener en cuenta las especies in-
cluidas en todos los géneros. Tradicional-
mente, en un sentido amplio, se consideran
a las especies generalmente grandes (de há-
bito clitocybioide) dentro del género Clitocy-
be, y las especies más pequeñas (de hábito
omfalinoide) dentro del género Omphalina,
sin embargo, esta delimitación es conflictiva
con las especies intermedias. Este sector de
la clave está basado en los trabajos de Sin-
ger (1970a) y Rathelhuber (1992, 2004).
— CLAVE O —
GÉNEROS DE ESPORADA BLANCA CON
ESTÍPITE CENTRAL, PILEIPELLIS NO
HIMENIFORME Y LAMINILLAS ANEXAS,
ADNATAS A SINUADAS
1 Esporas y elementos himeniales con pig-
mentos brillantes, acentuados en ejempla-
res deshidratados (necropigmentos) .......
................................... Callistosporium
1’ Esporas y elementos himeniales sin pig-
mentos brillantes ............................. 2
2 Esporas con paredes heterogéneas, con
una pared interna con ornamentaciones
amiloides o no, recubiertas por una pared
externa ............................... Gamundia
2’ Esporas con paredes homogéneas sin una
pared interna ornamentada ................. 3
3 Estípite cartilaginoso, frágil ................. 4
3’ Estípite carnoso o flexible .................. 7
4 Píleo cónico a campanulado, por lo menos
al comienzo del desarrollo, subpellis celular
presente .................. Mycena pro parte
4’ Píleo convexo a plano, subpellis celular au-
sente ............................................ 5
5 Estípite generalmente engrosado, longitudi-
nalmente estriado. Esporada crémea a ro-
sada .............................. Rhodocollybia
5’ Estípite no engrosado ni longitudinalmente
estriado. Generalmente bastante largo en
relación al píleo. Esporada blanca ........ 6
6 Estípite filiforme, naciendo de un esclerocio,
píleo menor a 20 mm diám., esporas típi-
camente menores a 6 µm long ... Collybia
6’ Estípite más engrosado, nunca filiforme,
nunca naciendo de un esclerocio, píleo ge-
neralmente mayor a 20 mm diám., espo-
ras usualmente mayores a 6 µm long .....
......................................... Gymnopus
7 Estípite generalmente engrosado, longitudi-
nalmente estriado. Esporada crémea a ro-
sada .............................. Rhodocollybia
7’ Estípite no engrosado ni longitudinalmente
estriado. Generalmente bastante largo en
relación al píleo. Esporada blanca ........ 8
N. Niveiro et al.: Hongos agaricoides de las Yungas argentinas. Clave de géneros
84
8 Laminillas sinuadas o anexas Tricholoma
8’ Laminillas adnatas a decurrentes ............
........................................... Clitocybe
AGRADECIMIENTOS
El presente trabajo forma parte de la Te-
sis doctoral del primer autor quien agradece
a los Drs. G. Robledo, E. Nohura y A. Rome-
ro los que la evaluaron en primera instancia.
Este trabajo fue posible gracias al Consejo
Nacional de Investigaciones Científicas y
Técnicas (CONICET) y a la Universidad Na-
cional del Nordeste (UNNE).
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