Métodos empleados en el análisis de los polifenoles en un laboratorio de baja complejidad
Palabras clave:
cuantificación, dinámica, fenoles, taninosResumen
Ricco, Rafael A.; Ignacio J. Agudelo; Marcelo L. Wagner. 2015. “Métodos empleados en el análisis de los polifenoles en un laboratorio de baja complejidad”. Lilloa 52 (2). Los polifenoles son el grupo de compuestos provenientes del metabolismo secundario más estudiados. Abarcan una amplia variedad de moléculas que contienen al menos un anillo aromático con uno o más grupos hidroxilos en su estructura. Son metabolitos secundarios que participan en la defensa química de las plantas contra los depredadores y en las interacciones alelopáticas. Además, se les adjudican una amplia variedad de actividades biológicas, muchas de las cuales están asociadas con su acción antioxidante. La dinámica de los polifenoles estudia la modificación cuali-cuantitativa de los polifenoles en las plantas en respuesta a las interacciones con factores bióticos o abióticos, como así también, las modificaciones producidas por los cambios fenológicos y ontológicos. El objetivo del trabajo es introducir las técnicas de análisis de los polifenoles presentes en las plantas para estudios de ecología química o para ser empleados, por ejemplo, en el control de calidad de plantas medicinales. Estos procedimientos incluyen métodos para el estudio de fenoles totales y para cada tipo de compuestos fenólicos que puedan ser realizados en laboratorios de baja complejidad.
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Agudelo I., Wagner M. L., Gurni A. A., Ricco R. A. 2013. Dinámica de polifenoles y estudio anatomo-histoquímico en Schinus longifolius (Lindl.) Speg. (Anacardiaceae) en respuesta a la infección por Calophya mammifex (Hemiptera – Calophyidae). Boletin Latinoamericano y del Caribe de Plantas Medicinales y Aromaticas 12: 162-175.
Arranz S., Valderas-Martínez P., Chiva-Blanch G., Casas R., Urpi-Sarda M., Lamuela-Raventos R. M., Estruch R. 2013. Cardioprotective effects of cocoa: clinical evidence from randomized clinical intervention trials in human. Molecular Nutricion & Food Research 57: 936-947.
Balas L., Vercauteren J. 1994. Extensive high-resolution reverse 2D NMR analysis for the structural elucidation of procyanidin oligomers. Magnetic Resonance in Chemistry 32: 386-393.
Barbehenn R. V., Constabel C. P. 2011. Tannins in plant-herbivore. Phytochemistry 72: 1551-1565.
Biasutto L., Mattarei A., Sassi N., Azzolini M., Romio M., Paradisi C., Zoratti M. 2014. Improving the efficacy of plant plyphenols. Anticancer Agents in Medicinal Chemistry 14: 1332-1342.
Chang C. C., Yang M. H., Wen H. M., Chern J. C. 2002. Estimation of total flavonoid content in propolis by two complementary colorimetric methods. Journal of Food and Drug Analysis 10: 178-182.
Cheynier V. 2005. Polyphenols in foods are more complex than often thought. The American Journal of Clinical Nutrition 81: 223S-229S.
Dao L., Friedman M. 1992. Chlorogenic Acid Content of Fresh and Processed Determined by Ultraviolet Spectrophotometric. Journal of Agricultural and Food Chemistry 40: 2152-2156.
Del Baño M. J., Lorente J., Castillo J. N., Benavente-García O., Del Rio J. A., Ortuño A., Quirin K. W., Gerard D. 2003. Phenolic diterpenes, flavones, and rosmarinic acid distribution during the development of leaves, flowers, stems, and roots of Rosmarinus officinalis. Antioxidant Activity. Journal of Agricultural and Food Chemistry 51: 4247-4253.
Habauzit V., Morand C. 2012. Evidence for a protective effect of polyphenols-containing foods on cardiovascular health: an update for clinicians. Therapeutic Advances in Chronic Disease 3: 87-106.
Hagerman A. E. 2002. Vanillin Assay. http://www.users.muohio.edu/hagermae/Vanillin%20Assay.pdf [julio 2015].
Harbone J. B., Williams C. A. 2000. Advance in flavonoids research since 1992. Phytochemistry 55: 481-504.
Hariri B., Salle G., Andary C. 1991. Involvement of flavonoids in the resistance of two popular cultivars to mistletoe (Viscum album L.). Protoplasma 162: 20-26.
Haslam E. 1988. Plant Polyphenols (syn. vegetable tannins) and chemical defense – reappraisal. Journal of Chemical Ecology 14: 1789-1805.
Haslam E. 1998. Practical Polyphenols - From Structure to Molecular Recognition and Physiological Action. Cambrige University, Cambrige, UK, pp. 18-22.
Ho Y. C., Yu H. T., Su N. W. 2012. Re-examination of Chromogenic Quantitative Assay for Determening Flavonoid Content. Journal of Agricultural and Food Chemistry 60: 2674-81.
Inoue K. H., Hagerman A. E. 1988. Determination of Gallotannin with Rhodanine. Analytical Biochemistry 169: 363-369.
Jia Z. S., Tang M. C., Wu J. M. 1999. The determination of flavonoid contents in mulberry and their scavenging effects on superoxide radicals. Food Chemistry 64: 555-559.
Kruger C. G., Dopke N. C., Treichel P. M., Folts J., Reed J. D. 2000. Matrix-assisted laser desorption/ionization time-of-flight mass spectrometry of polygalloyl polyflavan-3-ols in grape seed extracts. Journal of Agricultural and Food Chemistry 48: 1663-1667.
Lattanzio V., Kroon P. A., Quideau S., Treutter D. 2008. Plant Phenolics - Secondary Metabolites with diverse Functions, pp. 1-36. en Recent Advances in Polyphenol Research. Volumen 1. Editado por Fouad Daayf y Vincenzo Lattanzio, Blackwell Publishing, Oxford, UK.
Mabry T. J., Markham K. R., Thomas M. B. 1970. The systematic identification of the flavonoids. Springer-Verlag, Berlin and New York, New York pp. 354.
Makkar H. P. S., Bluemmel M., Borowy N. K., Becker K. 1993. Gravimetric determination of tannins and their correlations with chemical and protein precipitation methods. Journal of the Science of Food and Agriculture 61: 161-165.
Maksimovic Z., Malencic D., Kovacevic N. 2005. Polyphenol contents and antioxidant activity of Maydis stigma extracts. Bioreserch Technology 96: 873-877.
Manach C., Scalbert A., Morand C., Rémés C., Jiménez L. 2004. Polyphenols: Food sources and bioavailability. The American Journal of Clinical Nutrition 79: 727-747.
March R., Brodbelt J. 2008. Analysis of flavonoids: tandem mass spectroscopy, computational methods, and NMR. Journal of Mass Spectrometry 43: 1581-1617.
Markham K. R. 1982. Techniques of Flavonoid Identification. Academic Press, London, UK, pp. 144.
Mushtag M., Wani S. M. 2013. Polyphenols and Human health. A review. International Journal of Pharmacy and Biological Sciences 4: (B) 338-360.
Pandey K. B., Rizvi S. I. 2009. Plant Polyphenols as dietary antioxidants in human health and disease. Oxidative Medicine and Cellular Longevity. 2: 270-278.
Price M. L., Butler L. G. 1977. Rapid visual estimation and spectrophotometric determination of tannin content of sorghum grain. Journal of Agricultural and Food Chemistry 25: 1268-1273.
Price M. L., Van Scoyoc S., Butler L. G. 1978. A critical evaluation of the vanillin reaction as an assay for tannins in sorghum grains. Journal of Agricultural Food Chemistry 26: 1214-1218.
Porter L. J., Hrstich L. N., Chan B. C. 1986. The conversion of procyanidins and prodelphinidins to cyaniding and delphinidin. Phytochemistry 25: 223-230.
Quideau S., Deffieux D., Douat-Casassus C., Pouységu L. 2011. Plant Polyphenols: Chemical Properties, Biological Activities, and Synthesis. Angewandte Chemie International Edition 50: 586-621.
Ricco R. A., Lozano V., Lator V., Gurni A. A., Wagner M. L. 2008. Modificación en el perfil de polifenoles de Tripodanthus acutifolius (Ruiz et Pav.) Tiegh. (Loranthaceae) infectado por “cochinilla” (Homoptera) – Lecanidae). Latin American Journal of Pharmacy. 27: 258-262.
Ricco R. A., Wagner M. L., Gurni A. A. 2011 a. Dinámica de polifenoles de “cedrón” (Aloysia citrodora Palau -Verbenaceae-) en relación al desarrollo foliar. Boletín Latinoamericano del Caribe Plantas Medicinales y Aromáticas 10: 67-74.
Ricco R. A., Agudelo I. J., Garcés M., Evelson P., Wagner M. L., Gurni A. A. 2011 b. Polifenoles y actividad antioxidante en Equisetum giganteum L. (Equisetaceae). Boletín Latinoamericano y del Caribe de Plantas Medicinales y Aromáticas 10: 325-332.
Riipi M., Ossipov V., Lempa K., Haukioja E., Koricheva J., Ossipova S., Pihlaja K. 2002. Seasonal changes in birch leaf chemistry: are there trade-offs between leaf growth and accumulation of phenolics? Oecology 130: 380-390.
Rugna A., Ricco R., Gurni A., Wagner M. 2008. Variaciones en el contenido de los polifenoles foliares en Smilax campestris Griseb. -Smilacaceae- según su grado de desarrollo. Latin American Journal of Pharmacy 27: 247 - 249.
Rugna A. Z., Ricco R. A., Gurni A. A., Wagner M. L. 2011. Smilax campestris Griseb. -Smilacaceae-: variaciones en la producción de polifenoles en hojas sanas y atacadas por la oruga de la mariposa Agraulis vanillae L. -Heliconidae-. Dominguezia 27: 27-33.
Shohael A. M., Ali M. B., Yu K. W., Hahn E. J., Paek K. Y. 2006. Effect of temperature on secondary metabolites production and antioxidant enzyme activities in Eleutherococcus senticosus somatic embryos. Plant Cell, Tissue and Organ Culture 85: 219-228.
Treutter D. 2006. Significance of flavonoids in plant resistance: a review. Environmental Chemistry Letter 4: 147-157.
Vukics V., Guttman A. 2010. Structural characterization of flavonoids glycosides by multi-satage mass spectrometry. Mass Spectrometry Reviews 29: 1-16.
Wagner H., Bladt S. 1996. Plant drug analisys. A thin layer chromatography atlas. Second edition. Springer-Verlag. Berlin, Germany, pp. 384.
Waterman P. G., Mckey D. B. 1989. Herbivory and secondary compounds in rain forest plants. En: H. Lieth y M.J. A. Werger (editores), “Tropical rain forest ecosystems”. Elsevier, Amsterdam, Netherlands, pp. 513-536.
Waterman P. G., Mole S. 1994. Analysis of phenolic plant metabolites. Blackwell Scientific Publications, Oxford, UK, pp. 66-103.
Woisky R. G., Salatino A. 1998. Analysis of propolis: some parameters and procedures chemical quality control. Journal of Apicultural Research 37: 99-105.
Yoo K. M., Lee C. H., Lee H. G., Moon B. K., Lee C. Y. 2008. Relative antioxidant and cytoprotective activities of common herbs. Food Chemitry 106: 929-936.
