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Cría en cautiverio de Baeacris punctulatus (Orthoptera, Acrididae, Melanoplinae) Imprimir E-Mail

Adriana A. Michel y Héctor R. Terán

Acta Zoológica Lilloana, volumen 50 (1-2)


Acta zoológica lilloana 50 (1–2): 131–134, 2006 131 COMUNICACIÓN Cría en cautiverio de Baeacris punctulatus (Orthoptera, Acrididae, Melanoplinae) Michel, Adriana A. y Héctor R. Terán Instituto de Morfología Animal, Fundación Miguel Lillo. Miguel Lillo 251, (4000) S. M. de Tucumán, Argentina. E-mail: Esta dirección de correo electrónico está protegida contra los robots de spam, necesita tener Javascript activado para poder verla “The Breeding in captivity of Baeacris punctulatus (Orthoptera, Acrididae, Melanoplinae)”. Baeacris punctulatus (Thunberg) is one of the South American acridids species, economically important, with a greater geographic distribution than others of its genus. In this paper, not only directions for the breeding and the maintenance of this species in laboratory have been given, but also the different aspects of its living cycle have been analized. This contributions intend to establish the basis for the application of control methods related to the reproduction and the development of this specie. KEYWORDS: Orthoptera, Acrididae, Melanoplinae, breeding in captivity. PALABRAS CLAVE: Orthoptera, Acrididae, Melanoplinae, cría en cautiverio. La subfamilia Melanoplinae incluye los géneros de mayor diversidad y distribución geográfica de la acridiofauna Sudamericana, con numerosas especies de importancia económica, causantes de considerables pérdidas para la producción agrícola-ganadera (Ronderos, 1985; Bentos Pereira, 1989; Ronderos y Cigliano, 1991; Sánchez et al., 2001). Baeacris punctulatus (Thunberg) es la especie que une a su importancia económica la mayor distribución geográfica dentro del género (Carbonell y Ronderos, 1973; Barrera y Paganini, 1975; Turk y Barrera, 1979). La cría en cautiverio se realizó con el objetivo de establecer las características del ciclo de vida y obtener ejemplares de diferentes edades para estudios anátomohistológicos de órganos reproductivos, que permitan ampliar los conocimientos sobre la biología reproductiva de la especie y aportar datos a la taxonomía del género. El método de cría utilizado, es el empleado por los principales centros mundiales de acridiología para la producción en masa de acrididos (Hunter-Jones, 1961; Henry, 1985). Se trabajó con adultos silvestres colectados en áreas de pastoreo y banquinas del Km 28 y 29 de la Ruta provincial Nº 340 (Tucumán). Estos ejemplares fueron mantenidos en el laboratorio a temperatura ambiente, alimentados con hojas frescas de Taraxacum officinale y provistos de desovadores, conteniendo una mezcla de arena-tierra (1:1) esterilizada a 150 ºC, humedecida con agua destilada y Nipagín (ácido hidroxibenzoico etil ester). Entre los adultos silvestres se encontraron ejemplares parasitados por nemátodos del género Amphidomermis, este es el primer registro de éste género en tucuras de la Argentina. Barrera y Paganini (1975) y Turk y Barrera (1979) citan entre los enemigos naturales de B. punctulatus a nemátodos del género Hexamermis. De los ejemplares sanos se obtuvieron 150 desoves, de los cuales 30 se utilizaron como reserva de embriones y para determinar su viabilidad a bajas temperaturas, manteniendolos entre 2 y 9 meses a 4 ºC antes de iniciar su incubación. El resto de los desoves se utilizaron para el estudio del ciclo de vida, 30 para el desarrollo embrionario y 90 para el postembrionario y el imago. La incubación de los desoves y la crianza de los nacimientos se realizó en cámara de cría con un ambiente regulado a 30 ºC ± 1, entre 50-70% de H.R. y un fotoperíodo de 14 horas luz / 10 horas oscuridad. La incubación de los desoves se realizó en recipientes plásticos, de 8 cm de alto y 6 cm de diámetro con tapa a rosca perforada, con una mezcla de arena-tierra esterilizada y humedecida con agua destilada y Nipaqín. De estos desoves eclosio- 132 A. A. Michel & H. R. Te r á n : Cría en cautiverio de Baeacris punctulatus naron 1200 ejemplares, que fueron trasladados y mantenidos hasta el estadio ninfal III, en frascos de vidrios de 14 cm de alto por 7 cm de diámetro tapados con tela de muselina. Los restantes estadios ninfales y el adulto se criaron en jaulas de 24 x 12 x 12 cm, con las caras superior, inferior y laterales de madera, la cara posterior con una red plástica de malla fina para la ventilación y la cara anterior una tapa de vidrio móvil para permitir el manejo de los ejemplares, que fueron alimentados y provistos de desovadores como en los ejemplares de campo. Mediante observaciones diarias se determinó duración y estadios del desarrollo embrionario, diapausa, promedio de nacimiento por desove, duración y estadios del desarrollo postembrionario, longevidad del imago, cópula, oviposición y madurez sexual. El análisis de embriones se realizó bajo lupa binocular Leica-Wild M3Z, con solución fisiológica para ortópteros (isotónica) de Meisenheimer (Baldeig, 1975). Para la determinación de estadios y el análisis de la diapausa se utilizó la tabla de desarrollo de Michel y Teisaire (1996). La determinación de estadios nifales y el imago se realizó por el análisis de genitalia externa, pterotecas y las mudas de cada individuo (Turk y Barrera, 1979). Para el estudio del desarrollo postembrionario se realizaron observaciones diarias y se tomaron muestras, desde la eclosión de las ninfas hasta la muda imagal cada 48 horas, de 2 machos y 2 hembras; se tomaron 125 muestras y se fijaron 500 ninfas. Las ninfas vivas se agruparon por edades y se mantuvieron hasta el estado adulto para la obtención de nuevos desoves y fijación de ejemplares de diferentes edades y condiciones reproductivas. De estos ejemplares se tomaron muestras de 2 machos y 2 hembras, a las 24, 48, 72 y 120 horas y luego cada 5 días hasta los 30 días después de la muda imagal, machos y hembras en cópula, hembras a las 12, 24 y 48 horas después de la primera cópula y hembras durante la puesta; fijándose en el periodo imagal, 80 ejemplares. El material se fijó en Boüin (solución saturada de ácido pícrico, formol puro y ácido acético, 70 ml: 25ml: 5ml) durante 24 horas, se deshidrató en etanol y se conservó en alcohol n-butílico. Los ejemplares de referencia se encuentran depositados en la Colección Entomológica del Instituto-Fundación Miguel Lillo (IFML), Tucumán, Argentina. En condiciones de laboratorio se logró la cría y el mantenimiento de la especie durante 3 años, sin interrupción y pudiendo obtener en forma continúa hasta 3 generaciones por año. Tal como lo establecen Turk y Barrera (1979) la especie no presenta diapausa obligatoria durante su ciclo de vida. El promedio de huevos obtenidos por desoves, es de 16 unidades, con un R (rango) = 14-18 y una variación de 16 ± 2; esta variación fue menor a la observada por Barrera y Turk (1977) para los cuales el promedio de huevos por desoves obtenidos en el laboratorio a temperatura ambiente fue de 17 unidades, con un R = 14-20 y una variación de 17 ± 3. La duración media del desarrollo embrionario es de 20 días, con un R = 1822 y una variación de 20 ± 2. Esta variación se observó tanto en especies de langostas migratorias, Locusta migratoria migratorioides (Ronwal, 1936) y Anacridium aegyptium (Colombo y Bassato, 1957), como en tucuras de distribución Sudamericana, Dichropus elongatus (Sisler, 1981) y D. punctulatus (Michel y Teisaire, 1996); sin embargo Turk y Barrera (1979) establecen que la duración del desarrollo embrionario de Dichroplus Estadios Duración (días) I 2 II 1 III 1 IV 1 V 1 VI 2 VII 4 VIII 1 IX 3 X 2 XI 3 Total 21 Tabla 1. Desarrollo embrionario. Se resalta el estadio VII en el cual se produce la "diapausa embriónica facultativa". Acta zoológica lilloana 50 (1–2): 131–134, 2006 133 sis, según la tabla de Michel y Teisaire (1996), y puede permanecer en diapausa por un período máximo de 60 días sin que afecte su normal desarrollo (Tabla 1). Esta característica del desarrollo también fue observada en otras especies y géneros de la familia Acrididae, como lo menciona Andrewartha (1943) para Austroicetes cruciata, Chapman (1969) para los géneros Austroicetes y Melanoplus, Bodenheimer y Shulov (1971) para Morocan locust, y Sisler (1981) para Dichroplus elongatus. La duración media del desarrollo postembrionario en el macho es de 28 días, con un R = 27-29 y una variación de 28 ± 1; mientras que para la hembra la duración media es de 30 días, con un R = 29-31 y una variación de 30 ± 1. En ambos sexos se observan 5 estadios ninfales, siendo el quinto estadio de la hembra de mayor duración. En Acrididae la duración media del desarrollo postembrionario y el número estadios varían con la especie, el sexo e incluso con individuos de una misma puesta (Turk y Barrera, 1979; Sánchez et al., 2001). En B. punctulatus estos parámetros son constantes, observándose solo variación en la duración media con el sexo (Tabla 2). Los adultos mantenidos en cámara de cría tuvieron una longevidad máxima de 70 días. La “primeras cópula” se produce entre las 48 horas y los 12 días después de la muda imagal, lo cual sería la manifestación externa de la madurez sexual en el macho (Uvarov, 1966; Gillot, 1980; Richard y Davies, 1983). La duración de la cópula es de 4 horas, tiempo necesario para la formación del espermatóforo para la transferencia del fluído seminal con espermas a la hembra. La “primera puesta” se produce 10 días después de la cópula, lo cual es el indicio de la madurez sexual en la hembra. La punctulatus es notablemente constante según el tenor de la temperatura dada. El promedio de nacimientos por desoves fue de 14 individuos, con un R = 12-16 y una variación de 14 ± 2. Según Snodgrass (1935) y Uvarov (1966) la diferencia obtenida, entre el número de huevos y el número de nacimientos por desoves, corresponde a la cantidad de ovocitos no fecundados. En desoves mantenidos durante 2 meses a 4ºC antes de su incubación, la duración media del desarrollo embrionario se reduce a 15 días, con un R = 13-17 y una variación de 15 ± 2, el promedio de nacimiento por desoves fue igual al obtenido en los que fueron incubados inmediatamente después de la puesta. En los desoves expuestos a 9 meses de frío, el número promedio de nacimientos por desoves fue de 5 individuos, con un R = 37 y una variación de 5 ± 2, lo que indicaría una disminución de la viabilidad con la exposición a bajas temperaturas. En Dichroplus elongatus, especie con diapausa obligatoria, en condiciones de crías similares a las de B. punctulatus el número promedio de huevos por desoves se mantiene constante sin afectar su viabilidad, aún en desoves que fueron mantenidos por varios años a bajas temperaturas antes de su incubación (Lange, 1986). La reducción en la duración media del desarrollo embrionario y la disminución de la viabilidad de los huevos expuestos a bajas temperaturas confirman que Baeacris punctulatus es una especie con “diapausa embriónica facultativa” (Turk y Barrera, 1979). Se determinó que en los huevos expuestos a bajas temperaturas antes de su incubación, el desarrollo del embrión se detiene al comienzo del estadio VII, es decir antes de la iniciación de la katatrep- Estadios ninfales Duración macho (días) Duración hembra (días) I 6 6 II 6 6 III 4 4 IV 6 6 V 6 8 Total 28 30 Tabla 2. Desarrollo Postembrionario. Se destaca la diferencia en la duración media del V estadio ninfal con respecto al sexo. 134 A. A. Michel & H. R. Te r á n : Cría en cautiverio de Baeacris punctulatus duración de la puesta es de 90 minutos. Con una sola cópula cada hembra puede poner hasta 3 desoves, puestos a partir de la primera puesta en intervalos regulares cada 4 días, lo que nos permite inferir que en esta especie los espermatozoides se mantienen viables en la espermateca de la hembra durante 22 días. Los aportes realizados en esta contribución serán confirmados con estudios sobre morfogénesis del sistema reproductor y gametogénesis. AGRADECIMIENTOS A los Lics. Mauricio Barrera y Sonia Turk por el aporte con bibliografía especializada. Al Dr. Ricardo Ronderos por la identificación de la especie. A los Dres. Carlos Lange y Nora Camino por la identificación de los parásitos. Al Consejo de Investigaciones de la U.N.T. (CIUNT). BIBLIOGRAFÍA Andrewartha, H. G. 1943. The influence of temperature on the elimination of diapausa from the eggs of the race of Austroicetes cruciata Sauss (Acrididae) occurring in western Australia. Aust. J. Exp. Biol. Med. Sci., 20 (1942): 17-25. Baldeig, J. Z. 1975. Fisiología Animal Comparada. Universidad de Concepción, Inst. de Biología “Otmar Wilhelm Grob”, Dep. de Zoología (Chile). Barrera, M. & I. H. Paganini, 1975. Acrididos de Tucumán: Notas Biológicas. Acta zoológica lilloana, XXXI, 11: 107-124. Bentos Pereira, A. 1989. Distribución geográfica de las especies del género Dichroplus Stal (Orthoptera, Acrididae, Melanoplinae). Revta bras. Entomol., 33 (1): 31-47. Bodenheimer, I. S. & A. Shulov. 1971. Egg development and diapause in the Moroccan locust (Dociostaurus maroccanus Thnb). Bull. Res. Coun. Israel, 1: 59-75. Carbonell, C. S. & R. A. Ronderos. 1973. Las especies del grupo Punctulatus del género Dichropus Stal (Orthoptera,Acrididae). Revista del Museo de La Plata, 11: 359-398. Chapman, R. F. 1969. The insects, structure and function. XII + 819 pp. Ed. Elsevier, New York. Colombo, G. & M. Bassato. 1957. La differenziazione delle gonadi negli embrioni della cavallette. Ricerche istologiche su embrioni di Anacridium aegyptium L. 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